| 中英文名词和缩略语对照表 | 第1-8页 |
| 前言 | 第8-12页 |
| 中文摘要 | 第12-18页 |
| ABSTRACT | 第18-26页 |
| 第一部分 Buffalo大鼠移植型肝癌模型的生物学特点及影像表现 | 第26-38页 |
| 1 前言 | 第26页 |
| 2 材料和方法 | 第26-29页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·细胞及培养 | 第27-28页 |
| ·建立Buffalo大鼠移植型肝癌模型 | 第28页 |
| ·MRI检查 | 第28页 |
| ·胃十二指肠动静脉插管 | 第28-29页 |
| ·DSA检查 | 第29页 |
| ·病理学检查 | 第29页 |
| ·生物学行为及生存期观察 | 第29页 |
| ·统计分析 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-33页 |
| ·McA-RH7777细胞培养及Buffalo大鼠移植型肝癌模型 | 第29-30页 |
| ·Buffalo大鼠移植型肝癌生物学行为、体重改变及生存期 | 第30页 |
| ·MRI表现 | 第30-31页 |
| ·DSA表现 | 第31-32页 |
| ·病理学检查 | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| ·McA-RH7777细胞株特点 | 第33页 |
| ·建立Buffalo大鼠原位肝细胞肝癌的意义 | 第33-34页 |
| ·McA-RH7777细胞混合Matrigel建立Buffalo大鼠原位肝细胞肝癌的优点 | 第34页 |
| ·Buffalo大鼠原位肝细胞肝癌生物学特点 | 第34页 |
| ·Buffalo大鼠原位肝细胞肝癌MRI表现特点 | 第34-35页 |
| ·Buffalo大鼠插管注意事项及DSA表现 | 第35页 |
| 5 小结 | 第35页 |
| 6 参考文献 | 第35-38页 |
| 第二部分 厌氧条件下长双歧杆菌对体外培养的McA-RH7777肝癌细胞生长及VEGF表达的影响 | 第38-50页 |
| 1 前言 | 第38-39页 |
| 2 材料和方法 | 第39-41页 |
| ·长双歧杆菌制剂 | 第39页 |
| ·McA-RH7777肝癌细胞 | 第39页 |
| ·细胞培养 | 第39页 |
| ·WST-1比色法测定长双歧杆菌对McA-RH7777细胞的毒性作用 | 第39-40页 |
| ·酶联免疫吸附试验(ELISA)检测细胞上清液中VEGF蛋白含量 | 第40页 |
| ·逆转录聚合酶链式反应(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)检测VEGF和β-actin的表达。 | 第40-41页 |
| ·统计学处理 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-45页 |
| ·长双歧杆菌培养 | 第41-42页 |
| ·WST-1比色法检测长双歧杆菌对McA-RH7777细胞的毒性作用 | 第42页 |
| ·细胞形态观察 | 第42-43页 |
| ·ELISA分析细胞培养上清液中VEGF蛋白含量 | 第43-44页 |
| ·RT-PCR结果 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| ·厌氧菌对肿瘤细胞的细胞毒作用研究 | 第45页 |
| ·厌氧菌破坏乏氧癌细胞的可能性 | 第45-46页 |
| ·乏氧癌细胞诱导血管生成的机制 | 第46页 |
| ·肝细胞癌缺氧及血管生成 | 第46页 |
| ·长双歧杆菌对乏氧McA-RH7777肝癌细胞VEGF表达及分泌的影响 | 第46-47页 |
| 5 小结 | 第47-48页 |
| 6 参考文献 | 第48-50页 |
| 第三部分 MRI检测超顺磁性氧化铁纳米颗粒标记长双歧杆菌和C.novyi-NT的实验研究 | 第50-64页 |
| 1 前言 | 第51页 |
| 2 材料与方法 | 第51-54页 |
| ·细菌 | 第51页 |
| ·超顺磁性氧化铁 | 第51页 |
| ·长双歧杆菌PYG液体培养基 | 第51-52页 |
| ·超顺磁性氧化铁标记长双歧杆菌 | 第52页 |
| ·细菌活性克隆数检测 | 第52页 |
| ·电镜观察 | 第52页 |
| ·动物 | 第52页 |
| ·细胞及培养 | 第52-53页 |
| ·建立Buffalo大鼠移植型肝癌模型 | 第53页 |
| ·普鲁士蓝染色 | 第53页 |
| ·革兰氏染色 | 第53页 |
| ·MRI检测 | 第53-54页 |
| ·图像分析 | 第54页 |
| ·统计分析 | 第54页 |
| 3 结果 | 第54-60页 |
| ·细菌培养及SPIO标记结果 | 第54-55页 |
| ·电镜观察 | 第55-56页 |
| ·普鲁士蓝染色 | 第56-57页 |
| ·细菌活性试验 | 第57页 |
| ·细菌模型MRI成像 | 第57-59页 |
| ·体内实验MRI成像 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-62页 |
| ·磁共振检测SPIO标记厌氧菌的意义 | 第60-61页 |
| ·SPIO标记长双歧杆菌(或C.novyi-NT) | 第61页 |
| ·磁共振检测SPIO标记长双歧杆菌(或C.novyi-NT)体外磁共振信号变化 | 第61页 |
| ·磁共振检测SPIO标记长双歧杆菌体内磁共振信号变化 | 第61-62页 |
| 5 小结 | 第62页 |
| 6 参考文献 | 第62-64页 |
| 第四部分 长双歧杆菌联合化疗及经皮无水酒精注射治疗Buffalo大鼠皮下移植肝癌 | 第64-77页 |
| 1 前言 | 第65页 |
| 2 材料与方法 | 第65-68页 |
| ·细胞培养和大鼠皮下肝癌动物模型 | 第65-66页 |
| 细菌 | 第65页 |
| 细胞 | 第65页 |
| 动物 | 第65页 |
| 其它药物 | 第65-66页 |
| 大鼠皮下肝癌动物模型建立 | 第66页 |
| ·处理方法 | 第66页 |
| ·MRI扫描 | 第66页 |
| ·病理检查及免疫组化检测肿瘤组织VEGF表达 | 第66-67页 |
| ·瘤内及内脏器官组织中细菌计数 | 第67页 |
| ·革兰氏染色 | 第67页 |
| ·疗效判定 | 第67-68页 |
| 测量方法及体积计算: | 第67-68页 |
| 相对体积计算: | 第68页 |
| ·统计学方法 | 第68页 |
| 3 结果 | 第68-73页 |
| ·治疗效果 | 第68-70页 |
| ·肿瘤VEGF变化 | 第70-72页 |
| ·治疗安全性及肿瘤内细菌生长状况 | 第72-73页 |
| 4 讨论 | 第73-74页 |
| ·歧杆菌的特性及抗肿瘤机制 | 第73页 |
| ·双歧杆菌抗肿瘤治疗的缺陷及克服措施 | 第73-74页 |
| ·联合治疗的疗效及可能机制 | 第74页 |
| ·联合治疗的安全性 | 第74页 |
| 5 结论 | 第74-75页 |
| 6 参考文献 | 第75-77页 |
| 第五部分 肝动脉化疗栓塞联合无毒诺氏梭菌孢子瘤内注射治疗兔VX2肝癌 | 第77-100页 |
| 1 前言 | 第78页 |
| 2 材料与方法 | 第78-82页 |
| ·细菌孢子 | 第78页 |
| ·C.novyi-NT的培养和产孢 | 第78页 |
| ·C.novyi-NT的产孢条件 | 第78-79页 |
| ·孢子纯化 | 第79页 |
| ·细菌形态及孢子形态观察 | 第79-80页 |
| ·兔VX_2动物模型 | 第80页 |
| ·处理方法 | 第80-81页 |
| ·抗肿瘤疗效判定 | 第81-82页 |
| ·瘤内及正常组织活菌计数 | 第82页 |
| ·血浆生化及白细胞计数 | 第82页 |
| ·统计学方法 | 第82页 |
| 3 结果 | 第82-92页 |
| ·C.novyi-NT培养及孢子纯化 | 第82-83页 |
| ·TACE | 第83-84页 |
| ·TACE联合C.novyi-NT瘤内注射治疗 | 第84-85页 |
| ·抗肿瘤效果 | 第85-88页 |
| ·肿瘤内细菌生长状况 | 第88-89页 |
| ·生化改变 | 第89页 |
| ·肿瘤大体及光镜下病理学改变: | 第89-91页 |
| ·并发症及死亡原因 | 第91-92页 |
| 4 讨论 | 第92-96页 |
| ·肿瘤缺氧带来的治疗问题及梭菌溶瘤治疗的历史 | 第92-93页 |
| ·关于C.novyi-NT孢子的特性 | 第93页 |
| ·联合治疗方式的选择 | 第93-94页 |
| ·疗效 | 第94-95页 |
| ·并发症及死亡原因探讨 | 第95页 |
| ·抗肿瘤可能的机制探讨 | 第95-96页 |
| ·TACE联合梭菌治疗存在的问题 | 第96页 |
| 5 小结 | 第96页 |
| 6 参考文献 | 第96-100页 |
| 综述 利用低氧的厌氧菌抗肿瘤治疗 | 第100-108页 |
| 发表论文 | 第108-109页 |
| 附件 | 第109-127页 |
| 致谢 | 第127-128页 |
