| 英文缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 第一部分 酶消化联合化疗药物筛选法分离胃癌干细胞 | 第12-32页 |
| 一.前言 | 第12-13页 |
| 二.材料和方法 | 第13-18页 |
| (一)主要试剂及来源 | 第13-15页 |
| (二)主要仪器 | 第15页 |
| (三)标本采集与处理 | 第15页 |
| (四)主要试剂的配制 | 第15-17页 |
| (五)肿瘤细胞的分离与培养 | 第17页 |
| (六)化疗药物筛选培养及MTT检测 | 第17页 |
| (七)流式细胞仪检测分析 | 第17-18页 |
| (八)Western blot检测分析 | 第18页 |
| (九)统计学处理 | 第18页 |
| 三.结果 | 第18-23页 |
| (一)胃癌原发灶及转移灶内肿瘤千细胞的分离、培养及表型检测 | 第18-21页 |
| (二)化疗药物的选择 | 第21-23页 |
| 四.讨论 | 第23-27页 |
| 参考文献 | 第27-30页 |
| 小结 | 第30-32页 |
| 第二部分 应激性反应原作用于MicroRNA与CD44之间的表达平衡影响胃癌干细胞的表型形成 | 第32-67页 |
| 一.前言 | 第32-33页 |
| 二.材料和方法 | 第33-40页 |
| (一)主要试剂及来源 | 第33-36页 |
| (二)主要仪器 | 第36页 |
| (三)标本采集与处理(同上) | 第36页 |
| (四)主要试剂的配制 | 第36页 |
| (五)细胞培养及转染 | 第36-37页 |
| (六)半定量RT-PCR及实时定量PCR | 第37-38页 |
| (七)MTT检测分析 | 第38-39页 |
| (八)Western blot检测分析 | 第39页 |
| (九)双荧光素酶报告基因活性检测分析 | 第39-40页 |
| (十)统计学处理 | 第40页 |
| 三.结果 | 第40-50页 |
| (一)miR-337参与调节CD44在胃癌干细胞中的表达 | 第40-42页 |
| (二)应激性神经内分泌激素影响CO44在胃癌干细胞中的表达 | 第42-45页 |
| (三)应激性神经内分泌激素影响miR-733在胃癌干细胞中的表达 | 第45页 |
| (四)应激性神经内分泌激素通过活化STAT3和AP-1影响胃癌干细胞的表型改变 | 第45-48页 |
| (五)应激性神经内分泌激素能够对胃癌干细胞形成及生物行为具有促进作用 | 第48-50页 |
| (六)β-肾上腺素受体在胃癌原发灶和转移灶内的表达差异 | 第50页 |
| 四.讨论 | 第50-60页 |
| (一)miRNA的生物合成及基因表达调控机制 | 第50-52页 |
| (二)miRNA与肿瘤 | 第52-54页 |
| (三)miRNA可能发挥类似癌基因或抑癌基因的作用 | 第54-60页 |
| 参考文献 | 第60-67页 |
| 小结 | 第67-68页 |
| 文献综述 | 第68-90页 |
| 附录(基金赞助项目) | 第90-92页 |
| 致谢 | 第92-94页 |
| 研究生期间发表文章 | 第94页 |
