| 图表索引 | 第1-11页 |
| 缩略词一览表 | 第11-12页 |
| 摘要 | 第12-14页 |
| ABSTRACT | 第14-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-42页 |
| 1 研究综述 | 第17-40页 |
| ·HSV-1的研究现状 | 第17-31页 |
| ·蜂毒肽的结构和药理作用 | 第31-38页 |
| ·神蜂精的研究进展 | 第38-40页 |
| 2 研究的实用价值和理论意义 | 第40页 |
| 3 研究目的和所要解决的问题 | 第40-42页 |
| 第二章 蜂毒肽的分离纯化与鉴定 | 第42-52页 |
| 1 实验材料与方法 | 第42-47页 |
| ·实验材料 | 第42-44页 |
| ·实验方法 | 第44-47页 |
| ·蜂毒的采集 | 第44页 |
| ·色谱柱的装填 | 第44-45页 |
| ·蜂毒的提纯 | 第45页 |
| ·蜂毒肽的分离 | 第45-46页 |
| ·分离组分鉴定 | 第46-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-50页 |
| 3 讨论和结论 | 第50-52页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| ·结论 | 第51-52页 |
| 第三章 蜂毒肽和神蜂精的体内外抗HSV-1病毒研究 | 第52-66页 |
| 1 实验材料和方法 | 第52-59页 |
| ·实验材料 | 第52-54页 |
| ·实验方法 | 第54-59页 |
| ·HSV-1病毒滴度的测定 | 第54-56页 |
| ·药物对细胞的毒性检测 | 第56-57页 |
| ·测定药物体外抗HSV-1作用 | 第57-58页 |
| ·蜂毒肽和神蜂精体内抗HSV-1试验 | 第58-59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-64页 |
| ·病毒滴度TCID_(50) | 第59-60页 |
| ·药物对细胞的毒性 | 第60-61页 |
| ·药物对HSV-1病毒的治疗作用 | 第61-62页 |
| ·药物对感染病毒小鼠生存率和平均生存时间影响 | 第62-64页 |
| 3 结论讨论 | 第64-66页 |
| ·讨论 | 第64-65页 |
| ·结论 | 第65-66页 |
| 第四章 蜂毒肽和神蜂精抗HSV-1病毒机理研究 | 第66-81页 |
| 1 实验材料和方法 | 第66-71页 |
| ·实验材料 | 第66-68页 |
| ·实验方法 | 第68-71页 |
| ·药物对病毒的直接作用组（Ⅰ组） | 第68页 |
| ·药物抗病毒吸附组（Ⅱ组） | 第68-69页 |
| ·药物抗病毒生物合成组（Ⅲ组） | 第69-70页 |
| ·药物抗病毒释放作用组（Ⅳ组） | 第70-71页 |
| 2 结果与分析 | 第71-78页 |
| ·药物与病毒直接作用 | 第71-72页 |
| ·药物对病毒吸附的影响 | 第72-74页 |
| ·药物对病毒生物合成的影响 | 第74-76页 |
| ·药物对病毒释放的影响 | 第76-78页 |
| 3 结论与讨论 | 第78-81页 |
| ·讨论 | 第78-79页 |
| ·结论 | 第79-81页 |
| 第五章 蜂毒肽和神蜂精对HSV-1病毒感染后小鼠脑内p53和p21表达的影响 | 第81-91页 |
| 1 实验材料与方法 | 第81-86页 |
| ·实验材料 | 第81-83页 |
| ·实验方法 | 第83-86页 |
| ·分组与处理 | 第83页 |
| ·石蜡切片的制作 | 第83-85页 |
| ·免疫组化染色 | 第85-86页 |
| ·镜检与分析 | 第86页 |
| 2 结果与分析 | 第86-89页 |
| ·p21 WAF1/CIP1蛋白表达 | 第86-88页 |
| ·p53蛋白表达 | 第88-89页 |
| 3 结论与讨论 | 第89-91页 |
| ·讨论 | 第89-90页 |
| ·结果 | 第90-91页 |
| 结论与展望 | 第91-94页 |
| 1 结论 | 第91-92页 |
| 2 展望 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-106页 |
| 在读期间发表文章情况 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107页 |