| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-33页 |
| ·稀土上转换纳米材料 | 第15页 |
| ·上转换发光机理 | 第15-19页 |
| ·稀土上转换发光在生物标记中的应用 | 第19-32页 |
| ·引言 | 第19-21页 |
| ·实现细胞及生物在体成像 | 第21-25页 |
| ·核酸分子的检测 | 第25-28页 |
| ·免疫分析检测 | 第28-31页 |
| ·实现光动力治疗 | 第31-32页 |
| ·本课题的设计思想及研究内容 | 第32-33页 |
| 第二章 选题依据和表征方法 | 第33-41页 |
| ·选题依据 | 第33-37页 |
| ·荧光共振量传递（FRET） | 第33-34页 |
| ·适配子 | 第34-35页 |
| ·光动力学治疗（Photodynamic Therapy，PDT） | 第35-37页 |
| ·表征方法 | 第37-41页 |
| ·SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS－PAGE) | 第37-38页 |
| ·凝胶层析 | 第38-39页 |
| ·圆二色（circular dichroism） | 第39-41页 |
| 第三章 二氧化硅包覆的UCNPs合成及生物特异性标记研究 | 第41-49页 |
| ·实验部分 | 第41-43页 |
| ·试剂和仪器 | 第41-42页 |
| ·发光UCNPs的制备及二氧化硅包覆 | 第42页 |
| ·纳米晶和抗体分子的生物偶联 | 第42-43页 |
| ·硅片表面固定抗原蛋白分子 | 第43页 |
| ·荧光免疫标记物的光稳定性试验 | 第43页 |
| ·UCNPs标记抗体分子的固相免疫检测 | 第43页 |
| ·分析与讨论 | 第43-48页 |
| ·XRD分析 | 第43-44页 |
| ·扫描电镜表征 | 第44页 |
| ·荧光光谱及寿命表征 | 第44-45页 |
| ·圆二色光谱表征 | 第45-46页 |
| ·光稳定性试验比较 | 第46-47页 |
| ·免疫荧光显微成像 | 第47-48页 |
| ·本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 基于上转换FRET的均相检测 | 第49-57页 |
| ·实验部分 | 第49-50页 |
| ·仪器与试剂 | 第49-50页 |
| ·UCNPs的制备 | 第50页 |
| ·基于上转换FRET体系的构建及生物素分子检测 | 第50页 |
| ·分析与讨论 | 第50-55页 |
| ·上转换FRET体系均相检测的原理 | 第50-51页 |
| ·相转移UCNPs的及其偶联产物表征 | 第51-53页 |
| ·光谱表征 | 第53-54页 |
| ·生物素的均相免疫检测 | 第54-55页 |
| ·本章小结 | 第55-57页 |
| 第五章 近红外区FRET的均相检测 | 第57-65页 |
| ·实验部分 | 第58-59页 |
| ·试剂和仪器 | 第58页 |
| ·UCNPs-goat antihuman IgG的制备 | 第58页 |
| ·human IgG-GNPs的制备 | 第58-59页 |
| ·human IgG 免疫检测 | 第59页 |
| ·分析与讨论 | 第59-63页 |
| ·基于近红外上转换FRET设计的检测原理 | 第59-60页 |
| ·纳米粒子的制备 | 第60-61页 |
| ·光谱性质 | 第61-62页 |
| ·human IgG的均相免疫检测 | 第62-63页 |
| ·本章小结 | 第63-65页 |
| 第六章 UCNPs标记的适配子荧光探针 | 第65-83页 |
| ·实验部分 | 第66-68页 |
| ·试剂与仪器 | 第66-67页 |
| ·UCNPs的制备 | 第67页 |
| ·活性氧测试 | 第67-68页 |
| ·亲合素功能化的UCNPs | 第68页 |
| ·适配子功能化的UCNPs | 第68页 |
| ·ATP分子的检测 | 第68页 |
| ·分析与讨论 | 第68-81页 |
| ·UCNPs标记的适配子荧光探针检测原理 | 第68-70页 |
| ·UCNPs的表征 | 第70-72页 |
| ·活性氧测定 | 第72-73页 |
| ·光谱表征 | 第73-74页 |
| ·UCNPs标记的适配子荧光探针构建 | 第74-75页 |
| ·荧光寿命的测量 | 第75-76页 |
| ·ATP分子的检测 | 第76-77页 |
| ·特异性试验 | 第77-78页 |
| ·针对凝血酶的UCNPs标记的适配子荧光探针 | 第78-81页 |
| ·本章小结 | 第81-83页 |
| 第七章 基于UCNPs到QDs间的FRET分子光开关 | 第83-97页 |
| ·实验部分 | 第85-87页 |
| ·试剂和仪器 | 第85-86页 |
| ·UCNPs制备 | 第86页 |
| ·UCNPs-antiBSA IgG的制备 | 第86页 |
| ·BSA-QDs的制备 | 第86页 |
| ·QDs-BSA凝胶过滤纯化 | 第86-87页 |
| ·SDS-PAGE凝胶电泳 | 第87页 |
| ·圆二色谱测试 | 第87页 |
| ·UCNPs到QDs的FRET表征 | 第87页 |
| ·木瓜蛋白酶对能量传递体系的影响 | 第87页 |
| ·BSA检测 | 第87页 |
| ·分析与讨论 | 第87-96页 |
| ·UCNPs电镜表征 | 第87-88页 |
| ·光谱表征 | 第88-89页 |
| ·凝胶层析纯化BSA-QDs | 第89-90页 |
| ·SDS-PAGE电泳表征偶联产物 | 第90-91页 |
| ·偶联产物圆二色表征 | 第91-92页 |
| ·UCNPs到QDs的FRET | 第92-93页 |
| ·木瓜蛋白酶对共振能量传递体系的影响 | 第93-94页 |
| ·其他UCNPs到QDs的能量传递 | 第94-95页 |
| ·能量传递免疫复合体对BSA的检测 | 第95-96页 |
| ·本章小结 | 第96-97页 |
| 第八章 UCNPs藻红蛋白光敏复合体的PDT效应 | 第97-111页 |
| ·实验部分 | 第98-101页 |
| ·材料与仪器 | 第98-99页 |
| ·光谱表征 | 第99页 |
| ·单态氧的测量 | 第99-100页 |
| ·细胞培养 | 第100页 |
| ·MTT实验 | 第100页 |
| ·腹水瘤及实体小鼠模型的建立 | 第100-101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-109页 |
| ·UCNPs藻红蛋白光敏复合体的PDT原理示意图 | 第101页 |
| ·光谱表征 | 第101-104页 |
| ·荧光寿命的表征 | 第104-105页 |
| ·UCNPs_RPE的单态氧效应 | 第105-106页 |
| ·MTT结果 | 第106-107页 |
| ·光敏复合体对小鼠腹水瘤和实体瘤的PDT效应 | 第107-109页 |
| ·本章小结 | 第109-111页 |
| 第九章 结论与展望 | 第111-113页 |
| ·全文总结 | 第111-112页 |
| ·研究展望 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-125页 |
| 在学期间学术成果情况 | 第125-128页 |
| 指导教师及作者简介 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
