| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第一章 应用纳米线场效应管生物传感器对甲胎蛋白免于标记及实时响应的检测 | 第16-32页 |
| 1.1 引言 | 第16-18页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第18-19页 |
| 1.2.1 主要材料 | 第18-19页 |
| 1.2.2 主要仪器 | 第19页 |
| 1.3 方法 | 第19-24页 |
| 1.3.1 采用互补金属氧化物半导体(Complementary Metal Oxide Semiconductor, CMOS)“自上而下”法制作SiNW-FET | 第19-20页 |
| 1.3.2 PDMS微流体通道的制作 | 第20-21页 |
| 1.3.3 SiNW表面的功能化修饰 | 第21-22页 |
| 1.3.4 SiNW表面修饰方法的验证 | 第22-23页 |
| 1.3.5 SiNW-FET生物传感器与微流控通道的封接 | 第23-24页 |
| 1.3.6 传感检测 | 第24页 |
| 1.4 实验结果 | 第24-26页 |
| 1.4.1 SiNW-FET 生物传感器的电学特性 | 第24页 |
| 1.4.2 SiNW-FET的表面功能化的验证 | 第24-25页 |
| 1.4.3 AFP溶液的电学检测 | 第25-26页 |
| 1.5 讨论 | 第26-28页 |
| 1.6 结论 | 第28页 |
| 参考文献 | 第28-32页 |
| 第二章 改进型硅纳米带场效应管生物传感器对器件稳定性的提高 | 第32-50页 |
| 2.1 引言 | 第32-33页 |
| 2.2 材料 | 第33-35页 |
| 2.2.1 主要材料和试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第34-35页 |
| 2.3 方法 | 第35-39页 |
| 2.3.1 采用“自上而下”法制作SiNR-FET | 第35-37页 |
| 2.3.2 SiNR的表面功能化修饰 | 第37页 |
| 2.3.3 SiNR-FET传感器与PDMS微流道的封接 | 第37-38页 |
| 2.3.4 对CEA溶液的检测 | 第38-39页 |
| 2.4 结果 | 第39-43页 |
| 2.4.1 SiNR-FET器件的形态和电学特性 | 第39-40页 |
| 2.4.2 SiNR生物传感器在CEA抗原溶液电学检测中的表现 | 第40-43页 |
| 2.5 讨论 | 第43-44页 |
| 2.6 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 第三章 改进修饰方法对血清中多种肿瘤标志物的同时检测 | 第50-67页 |
| 3.1 引言 | 第50-51页 |
| 3.2 材料 | 第51-52页 |
| 3.2.1 主要材料和试剂 | 第51-52页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第52页 |
| 3.3 实验方法 | 第52-56页 |
| 3.3.1 硅纳米线生物传感器的制备 | 第52-53页 |
| 3.3.2 SiNWs-FET生物传感器的修饰 | 第53-54页 |
| 3.3.3 多通路微流道系统的制备 | 第54-55页 |
| 3.3.4 两种修饰方法的灵敏度比较 | 第55页 |
| 3.3.5 缓冲液离子浓度对生物传感器灵敏度的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.6 多种肿瘤标记物电学信号的多通路实时检测 | 第56页 |
| 3.3.7 对人血清中CEA和 AFP的电学信号测量 | 第56页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第56-62页 |
| 3.4.1 使用GNPs修饰的纳米线生物传感器的灵敏度 | 第56-57页 |
| 3.4.2 溶液离子浓度对SiNWs-FET生物传感器灵敏度的影 | 第57-59页 |
| 3.4.3 多种肿瘤标志物的多路实时检测 | 第59-60页 |
| 3.4.4 使用SiNWs-FET生物传感器对人血清中CEA和 AFP的电流信号测量 | 第60-62页 |
| 3.5 结论 | 第62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 第四章 双栅调控硅纳米带生物传感器的加工与肿瘤标记物检测 | 第67-83页 |
| 4.1 引言 | 第67-69页 |
| 4.2 材料 | 第69页 |
| 4.2.1 主要材料和试剂 | 第69页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第69页 |
| 4.3 方法 | 第69-73页 |
| 4.3.1 DG-SiNR-FET生物传感器的制备 | 第69-71页 |
| 4.3.2 SiNRs表面的功能化修饰 | 第71-72页 |
| 4.3.3 PDMS微流体通道的制作与封接 | 第72-73页 |
| 4.3.4 检测 | 第73页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第73-78页 |
| 4.4.1 器件的形貌 | 第73-74页 |
| 4.4.2 修饰效果的表征 | 第74-75页 |
| 4.4.3 DG-SiNR-FET生物传感器的电学性能 | 第75-78页 |
| 4.5 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-83页 |
| 第五章 总结与展望 | 第83-86页 |
| 5.1 总结 | 第83-84页 |
| 5.2 展望 | 第84-86页 |
| 第六章 硅纳米线场效应管传感器研究进展 | 第86-104页 |
| 6.1 背景 | 第86-87页 |
| 6.2 场效应管生物传感器的基本原理 | 第87-88页 |
| 6.3 硅纳米线场效应管生物传感器举例 | 第88-91页 |
| 6.3.1 蛋白质的检测 | 第88-89页 |
| 6.3.2 核酸检测 | 第89-90页 |
| 6.3.3 病毒检测 | 第90-91页 |
| 6.3.4 小分子的检测 | 第91页 |
| 6.4 增加纳米传感器灵敏度的方法 | 第91-96页 |
| 6.4.1 用于提高分析物捕获效率的分支纳米线 | 第91-92页 |
| 6.4.2 亚阈值检测 | 第92-93页 |
| 6.4.3 降低德拜屏蔽效应 | 第93页 |
| 6.4.4 电学动力效应增强 | 第93-94页 |
| 6.4.5 高频测量 | 第94页 |
| 6.4.6 纳米线-纳米孔传感器 | 第94-95页 |
| 6.4.7 双栅纳米线生物传感器 | 第95页 |
| 6.4.8 在生理溶液中的检测 | 第95-96页 |
| 6.5 硅纳米线场效应生物传感器的未来与挑战 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-104页 |
| 科研成果总结 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
