| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-11页 |
| 主要缩略词 | 第11-14页 |
| 1 绪论 | 第14-24页 |
| 1.1 问题的提出及研究意义 | 第14-15页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第15-22页 |
| 1.2.1 细胞凝胶复合物的主要形态 | 第15-18页 |
| 1.2.2 凝胶包封的细胞种类 | 第18-21页 |
| 1.2.3 细胞凝胶复合体在组织工程中的应用 | 第21-22页 |
| 1.3 本文研究目的和内容 | 第22-24页 |
| 1.3.1 研究目的 | 第22页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第22页 |
| 1.3.3 本文创新点 | 第22-24页 |
| 2 海藻酸盐微纤维的微流控制备与表征 | 第24-42页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 材料及方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 实验材料与仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.2.2 微流控聚焦流装置的加工 | 第26-27页 |
| 2.2.3 有机玻璃流控支撑件的加工 | 第27-28页 |
| 2.2.4 组装微流控元件 | 第28页 |
| 2.2.5 构建微纤维生成实验平台 | 第28-29页 |
| 2.2.6 生成海藻酸钙微纤维 | 第29页 |
| 2.2.7 扫描电镜观察微纤维 | 第29-30页 |
| 2.2.8 测定缝合强度 | 第30页 |
| 2.3 实验结果 | 第30-37页 |
| 2.3.1 拉锥毛细管的制取 | 第30页 |
| 2.3.2 有机玻璃流控支撑件的加工 | 第30-31页 |
| 2.3.3 微流控聚焦流装置的构建 | 第31-32页 |
| 2.3.4 微纤维生成实验平台的构建 | 第32页 |
| 2.3.5 微纤维外貌形态 | 第32-34页 |
| 2.3.6 微纤维生成所需的样本流量及其与微纤维直径的关系 | 第34-35页 |
| 2.3.7 扫描电镜观察微纤维形态 | 第35-36页 |
| 2.3.8 微纤维的缝合强度 | 第36-37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-40页 |
| 2.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 3 骨髓间充质干细胞在微纤维中的生长、增殖及活力的研究 | 第42-54页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 材料及方法 | 第42-47页 |
| 3.2.1 实验材料与仪器设备 | 第42-44页 |
| 3.2.2 骨髓间充质干细胞(MSCs)的培养 | 第44页 |
| 3.2.3 微纤维包封骨髓间充质干细胞(MSCs) | 第44-45页 |
| 3.2.4 细胞-微纤维绿色荧光探针(DiO)染色 | 第45页 |
| 3.2.5 细胞-微纤维Live/Dead染色检测细胞活性 | 第45-46页 |
| 3.2.6 CCK-8法检测MSCs在微纤维中的增殖能力 | 第46页 |
| 3.2.7 酶联免疫吸附测定(Elisa)测定微纤维中MSCs释放VEGF的浓度 | 第46-47页 |
| 3.3 实验结果 | 第47-50页 |
| 3.3.1 MSCs在微纤维中的生长情况 | 第47-48页 |
| 3.3.2 MSCs在微纤维中的活性检测 | 第48页 |
| 3.3.3 MSCs在微纤维中的增殖的能力 | 第48-49页 |
| 3.3.4 微纤维中MSCs分泌释放VEGF的浓度含量变化 | 第49-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 4 骨髓间充质干细胞在微纤维中的内皮分化 | 第54-70页 |
| 4.1 引言 | 第54页 |
| 4.2 材料和方法 | 第54-63页 |
| 4.2.1 实验材料与仪器设备 | 第54-57页 |
| 4.2.2 骨髓间充质干细胞(MSCs)的培养 | 第57页 |
| 4.2.3 微纤维包封骨髓间充质干细胞(MSCs) | 第57-58页 |
| 4.2.4 微纤维中血管内皮细胞(VEC)免疫荧光染色 | 第58-59页 |
| 4.2.5 RT-PCR检测微纤维中血管内皮细胞(VEC)相关基因标志物的表达 | 第59-61页 |
| 4.2.6 WesternBlot检测微纤维中血管内皮细胞(VEC)相关蛋白标志物的表达 | 第61-62页 |
| 4.2.7 荧光染色与流式细胞仪分析： | 第62-63页 |
| 4.3 实验结果 | 第63-66页 |
| 4.3.1 微纤维中的MSCs分化成血管内皮细胞(VEC) | 第63-64页 |
| 4.3.2 微纤维中VEC特异性标志CD31、vWF以及VE-cadherin基因和蛋白的表达 | 第64-65页 |
| 4.3.3 流式细胞术定量检测微纤维中血管内皮细胞的比例 | 第65-66页 |
| 4.4 讨论 | 第66-69页 |
| 4.5 本章小结 | 第69-70页 |
| 5 细胞微纤维复合物体内移植安全性的研究 | 第70-76页 |
| 5.1 引言 | 第70页 |
| 5.2 材料和方法 | 第70-73页 |
| 5.2.1 实验材料与仪器设备 | 第70-72页 |
| 5.2.2 骨髓间充质干细胞(MSCs)的培养 | 第72页 |
| 5.2.3 微纤维包封骨髓间充质干细胞(MSCs) | 第72-73页 |
| 5.2.4 小鼠细胞微纤维移植急性毒性模型的建立 | 第73页 |
| 5.2.5 HE染色法表征器官组织学形态 | 第73页 |
| 5.3 实验结果 | 第73-74页 |
| 5.4 讨论 | 第74-75页 |
| 5.5 本章小结 | 第75-76页 |
| 6 中空管状微纤维合成初探 | 第76-82页 |
| 6.1 引言 | 第76页 |
| 6.2 材料和方法 | 第76-79页 |
| 6.2.1 实验材料与仪器设备 | 第76-77页 |
| 6.2.2 十字交叉微流控装置的加工 | 第77-78页 |
| 6.2.3 构建微纤维生成实验平台 | 第78页 |
| 6.2.4 生成中空状海藻酸钙微纤维 | 第78-79页 |
| 6.3 实验结果 | 第79-80页 |
| 6.3.1 基于微丝模塑的十字交叉PDMS微流控芯片构建 | 第79页 |
| 6.3.2 中空微纤维外貌形态 | 第79-80页 |
| 6.4 讨论 | 第80-81页 |
| 6.5 本章小结 | 第81-82页 |
| 7 结论与展望 | 第82-84页 |
| 7.1 主要结论 | 第82-83页 |
| 7.2 展望 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-102页 |
| 附录 | 第102页 |
| A.作者在攻读博士学位期间科研及发表的论文情况 | 第102页 |
| B.参加的科研项目情况 | 第102页 |
