| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩写词 | 第12-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-26页 |
| 1.1 植物体内的活性氧 | 第13-17页 |
| 1.1.1 活性氧的产生 | 第14-15页 |
| 1.1.2 活性氧的清除机制 | 第15-16页 |
| 1.1.3 活性氧的作用 | 第16-17页 |
| 1.2 植物NADPH氧化酶 | 第17-21页 |
| 1.2.1 植物NADPH氧化酶的结构和研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2.2 植物NADPH氧化酶的功能 | 第18-20页 |
| 1.2.2.1 植物NADPH氧化酶在生物胁迫中的作用 | 第18页 |
| 1.2.2.2 植物NADPH氧化酶在非生物胁迫中的作用 | 第18-20页 |
| 1.2.2.3 植物NADPH氧化酶在植物生长发育中的作用 | 第20页 |
| 1.2.3 植物NADPH氧化酶活性的调节机制 | 第20-21页 |
| 1.3 MPK级联系统 | 第21-23页 |
| 1.3.1 MPK级联系统的组成和分类 | 第21-22页 |
| 1.3.2 MPK级联系统和由NADPH氧化酶产生的H2O2的交叉响应 | 第22-23页 |
| 1.4 研究材料背景 | 第23页 |
| 1.5 立题依据和研究内容 | 第23-26页 |
| 1.5.1 立题依据 | 第23页 |
| 1.5.2 研究内容和技术路线 | 第23-26页 |
| 第二章 材料与方法 | 第26-32页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第26-29页 |
| 2.1.1 植物材料处理 | 第26页 |
| 2.1.2 总RNA的提取 | 第26-27页 |
| 2.1.3 cDNA合成 | 第27-28页 |
| 2.1.4 实时荧光定量PCR分析 | 第28-29页 |
| 2.2 油菜生理指标的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.1 H_2O_2和·OH的测定方法 | 第29页 |
| 2.2.2 抗氧化酶活性的测定方法 | 第29-30页 |
| 2.3 试剂和仪器 | 第30-31页 |
| 2.3.1 主要生化试剂 | 第30页 |
| 2.3.2 主要仪器设备 | 第30页 |
| 2.3.3 实时荧光定量PCR引物的设计 | 第30-31页 |
| 2.4 数据分析 | 第31-32页 |
| 第三章 实验结果 | 第32-47页 |
| 3.1 逆境胁迫对油菜RBOHA/RBOHD基因表达的影响 | 第32-38页 |
| 3.1.1 逆境胁迫对油菜RBOHA基因表达的影响 | 第32-34页 |
| 3.1.2 逆境胁迫对油菜RBOHD基因表达的影响 | 第34-35页 |
| 3.1.3 DPI、U0126、DMTU预处理后再经盐和低温胁迫油菜RBOHA/RBOHD基因的表达分析 | 第35-37页 |
| 3.1.4 油菜RBOHA/RBOHD基因的组织特异性表达分析 | 第37-38页 |
| 3.2 盐胁迫下油菜生理指标的变化 | 第38-42页 |
| 3.2.1 盐胁迫下油菜ROS含量的变化 | 第38页 |
| 3.2.2 盐胁迫下油菜抗氧化酶活性的变化 | 第38-40页 |
| 3.2.3 DPI、U0126、DMTU预处理后再经盐胁迫油菜ROS含量的变化 | 第40-41页 |
| 3.2.4 DPI、U0126、DMTU预处理后再经盐胁迫油菜抗氧化酶活性的变化 | 第41-42页 |
| 3.3 低温胁迫下油菜生理指标的变化 | 第42-47页 |
| 3.3.1 低温胁迫下油菜ROS含量的变化 | 第42-43页 |
| 3.3.2 低温胁迫下油菜抗氧化酶活性的变化 | 第43-44页 |
| 3.3.3 DPI、U0126、DMTU预处理后再经低温胁迫油菜ROS含量的变化 | 第44-45页 |
| 3.3.4 DPI、U0126、DMTU预处理后再经低温胁迫油菜抗氧化酶活性的变化 | 第45-47页 |
| 第四章 讨论 | 第47-51页 |
| 4.1 RBOHA/RBOHD基因在逆境胁迫下的表达分析 | 第47页 |
| 4.2 MPK级联途径参与逆境胁迫下RBOHA/RBOHD基因的表达 | 第47-48页 |
| 4.3 MPK级联途径参与ROS的产生和清除 | 第48-51页 |
| 第五章 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-64页 |
| 攻读硕士期间发表论文情况 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
