| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 文献回顾 | 第15-21页 |
| 第一部分 检测食管癌中BMP7的表达 | 第21-30页 |
| 1 材料 | 第21-24页 |
| 1.1 组织 | 第21页 |
| 1.2 细胞系 | 第21页 |
| 1.3 主要试剂 | 第21-22页 |
| 1.4 主要仪器 | 第22-23页 |
| 1.5 主要试剂配制方法 | 第23-24页 |
| 2 方法 | 第24-28页 |
| 2.1 检测ESCC组织中BMP7的表达 | 第24-25页 |
| 2.2 检测食管癌细胞系中BMP7的表达 | 第25-28页 |
| 3 结果 | 第28-29页 |
| 3.1 BMP7在ESCC组织中表达 | 第28页 |
| 3.2 BMP7在食管癌细胞系中表达 | 第28-29页 |
| 4 讨论 | 第29-30页 |
| 第二部分 CAF与食管癌预后的关系 | 第30-41页 |
| 1 材料 | 第30-31页 |
| 1.1 组织 | 第30页 |
| 1.2 主要试剂 | 第30页 |
| 1.3 主要仪器 | 第30-31页 |
| 1.4 主要试剂配制方法 | 第31页 |
| 2 方法 | 第31-34页 |
| 2.1 检测ESCC组织中CAF的存在 | 第31-32页 |
| 2.2 CAF与ESCC预后的关系 | 第32-34页 |
| 3 结果 | 第34-39页 |
| 3.1 CAF在ESCC组织中存在 | 第34-35页 |
| 3.2 CAF与ESCC预后密切相关 | 第35-39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 第三部分 食管癌通过旁分泌BMP7促进NF转化为CAF | 第41-61页 |
| 1 材料 | 第41-45页 |
| 1.1 组织 | 第41页 |
| 1.2 裸鼠 | 第41页 |
| 1.3 细胞系 | 第41页 |
| 1.4 主要试剂 | 第41-43页 |
| 1.5 主要仪器 | 第43页 |
| 1.6 主要试剂配制方法 | 第43-45页 |
| 2 方法 | 第45-55页 |
| 2.1 原代培养NF和CAF | 第45-46页 |
| 2.2 原代培养NF和CAF的纯化 | 第46-47页 |
| 2.3 原代培养NF和CAF的鉴别 | 第47-48页 |
| 2.4 检测NF和CAF中BMP7受体的表达(Werstern Blot) | 第48-50页 |
| 2.5 食管癌细胞上清对原代NF活化的影响 | 第50-53页 |
| 2.6 动物实验 | 第53-55页 |
| 3 结果 | 第55-59页 |
| 3.1 原代培养NF和CAF | 第55页 |
| 3.2 原代NF和CAF的鉴定 | 第55-56页 |
| 3.3 原代NF和CAF表达BMP7受体 | 第56页 |
| 3.4 食管癌细胞上清对原代NF活化的影响 | 第56-57页 |
| 3.5 裸鼠皮下成瘤 | 第57-58页 |
| 3.6 冰冻组织免疫荧光染色 | 第58-59页 |
| 4 讨论 | 第59-61页 |
| 第四部分 CAF促进食管癌细胞系的增殖 | 第61-65页 |
| 1 材料 | 第61-62页 |
| 1.1 细胞系 | 第61页 |
| 1.2 主要试剂 | 第61页 |
| 1.3 主要仪器 | 第61-62页 |
| 1.4 主要试剂配制方法 | 第62页 |
| 2 方法 | 第62-63页 |
| 2.1 原代培养CAF和NF细胞上清的收集 | 第62页 |
| 2.2 细胞准备 | 第62页 |
| 2.3 细胞处理 | 第62-63页 |
| 2.4 细胞增殖实验(MTT实验) | 第63页 |
| 2.5 统计 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-64页 |
| 4 讨论 | 第64-65页 |
| 小结 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 个人简历和研究成果 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |