| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 第1章 绪论 | 第13-29页 |
| 1.1 纳米酶概述 | 第13-22页 |
| 1.1.1 纳米酶的类型 | 第14-18页 |
| 1.1.2 纳米酶催化性能的调控方法 | 第18-21页 |
| 1.1.3 纳米酶的主要应用 | 第21-22页 |
| 1.1.4 纳米酶材料的研究总结 | 第22页 |
| 1.2 金属有机框架 | 第22-24页 |
| 1.2.1 金属有机框架的合成 | 第22-23页 |
| 1.2.2 金属有机框架纳米酶的研究进展 | 第23-24页 |
| 1.3 金属有机框架衍生物 | 第24-26页 |
| 1.4 研究目标、研究内容及拟采用的技术路线 | 第26-29页 |
| 1.4.1 研究目标 | 第26页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第26页 |
| 1.4.3 拟采用的技术路线 | 第26-29页 |
| 第2章 MIL-53(Fe)微波辅助合成、过氧化物模拟酶特性及其用于葡萄糖生物传感 | 第29-41页 |
| 2.1 引言 | 第29-30页 |
| 2.2 实验部分 | 第30-32页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第30页 |
| 2.2.2 仪器 | 第30页 |
| 2.2.3 MIL-53(Fe)的制备 | 第30-31页 |
| 2.2.4 电子自旋共振(ESR) | 第31页 |
| 2.2.5 MIL-53(Fe)的稳定性 | 第31页 |
| 2.2.6 比色检测、动力学分析和葡萄糖分析的步骤 | 第31-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-40页 |
| 2.3.1 微波辅助法合成MIL-53(Fe)的表征 | 第32-34页 |
| 2.3.2 MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶活性 | 第34-38页 |
| 2.3.3 该葡萄糖检测方法的分析特性及应用 | 第38-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 第3章 甘氨酸修饰的MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶特性及其在葡萄糖测定中的应用 | 第41-53页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 实验部分 | 第42-44页 |
| 3.2.1 化学试剂 | 第42页 |
| 3.2.2 仪器 | 第42页 |
| 3.2.3 MIL-53(Fe)和Glycine-MIL-53(Fe)的制备 | 第42-43页 |
| 3.2.4 MIL-53(Fe)和Glycine-MIL-53(Fe)的稳定性 | 第43页 |
| 3.2.5 基于Glycine-MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶特性检测H2O2的步骤 | 第43页 |
| 3.2.6 动力学分析 | 第43页 |
| 3.2.7 血清样本中的葡萄糖分析 | 第43-44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-52页 |
| 3.3.1 Glycine-MIL-53(Fe)的表征 | 第44-45页 |
| 3.3.2 Glycine-MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶活性和稳定性评估 | 第45-49页 |
| 3.3.3 Glycine-MIL-53(Fe)催化活性的影响因素 | 第49-50页 |
| 3.3.4 基于Glycine-MIL-53(Fe)MOFs模拟酶特性检测血糖 | 第50-52页 |
| 3.4 小结 | 第52-53页 |
| 第4章 Ce-MOF衍生的CeO_2/C纳米线的过氧化物模拟酶特性及其生物传感应用 | 第53-69页 |
| 4.1 引言 | 第53-54页 |
| 4.2 实验部分 | 第54-56页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第54页 |
| 4.2.2 二氧化铈基纳米材料的制备 | 第54-55页 |
| 4.2.3 评估CeO_2/C纳米线的过氧化物酶活性和稳定性的步骤 | 第55页 |
| 4.2.4 动力学研究步骤 | 第55页 |
| 4.2.5 实际血样中葡萄糖测定步骤 | 第55-56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-67页 |
| 4.3.1 CeO_2/C纳米线的表征 | 第56-59页 |
| 4.3.2 CeO_2/C纳米线的过氧化物模拟酶特性 | 第59-60页 |
| 4.3.3 CeO_2/C纳米线煅烧温度的优化 | 第60-61页 |
| 4.3.4 CeO_2/C纳米线的稳定性 | 第61-62页 |
| 4.3.5 动力学分析 | 第62-63页 |
| 4.3.6 CeO_2/C过氧化物模拟酶活性测定H2O2的条件优化 | 第63-64页 |
| 4.3.7 葡萄糖的测定 | 第64-67页 |
| 4.4 小结 | 第67-69页 |
| 第5章 金属有机框架衍生的多孔碳负载钴纳米的过氧化物模拟酶特性及其生物传感应用 | 第69-87页 |
| 5.1 引言 | 第69-70页 |
| 5.2 实验部分 | 第70-72页 |
| 5.2.1 试剂和仪器 | 第70页 |
| 5.2.2 NH_2-MIL-88(Fe)和CoNPs/MC的制备 | 第70-71页 |
| 5.2.3 评估CoNPs/MC的过氧化物酶活性和稳定性的步骤 | 第71页 |
| 5.2.4 动力学研究步骤 | 第71页 |
| 5.2.5 实际血样中葡萄糖测定步骤 | 第71-72页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第72-85页 |
| 5.3.1 CoNPs/MC的合成及表征 | 第72-75页 |
| 5.3.2 CoNPs/MC的过氧化物模拟酶活性 | 第75-77页 |
| 5.3.3 CoNPs/MC催化反应过程中的活性组分 | 第77-78页 |
| 5.3.4 CoNPs/MC协同的过氧化物模拟酶活性的可能原因分析 | 第78页 |
| 5.3.5 动力学分析 | 第78-80页 |
| 5.3.6 CoNPs/MC过氧化物模拟酶的稳定性 | 第80页 |
| 5.3.7 CoNPs/MC过氧化物模拟酶活性测定H2O2的条件优化 | 第80-83页 |
| 5.3.8 基于CoNPs/MC纳米酶检测血糖 | 第83-85页 |
| 5.4 小结 | 第85-87页 |
| 全文总结与展望 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-109页 |
| 读博士学位期间的研究成果 | 第109-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
