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金属有机框架及其衍生物的模拟酶特性及分析应用研究

摘要第7-9页
Abstract第9-12页
第1章 绪论第13-29页
    1.1 纳米酶概述第13-22页
        1.1.1 纳米酶的类型第14-18页
        1.1.2 纳米酶催化性能的调控方法第18-21页
        1.1.3 纳米酶的主要应用第21-22页
        1.1.4 纳米酶材料的研究总结第22页
    1.2 金属有机框架第22-24页
        1.2.1 金属有机框架的合成第22-23页
        1.2.2 金属有机框架纳米酶的研究进展第23-24页
    1.3 金属有机框架衍生物第24-26页
    1.4 研究目标、研究内容及拟采用的技术路线第26-29页
        1.4.1 研究目标第26页
        1.4.2 研究内容第26页
        1.4.3 拟采用的技术路线第26-29页
第2章 MIL-53(Fe)微波辅助合成、过氧化物模拟酶特性及其用于葡萄糖生物传感第29-41页
    2.1 引言第29-30页
    2.2 实验部分第30-32页
        2.2.1 材料与试剂第30页
        2.2.2 仪器第30页
        2.2.3 MIL-53(Fe)的制备第30-31页
        2.2.4 电子自旋共振(ESR)第31页
        2.2.5 MIL-53(Fe)的稳定性第31页
        2.2.6 比色检测、动力学分析和葡萄糖分析的步骤第31-32页
    2.3 结果与讨论第32-40页
        2.3.1 微波辅助法合成MIL-53(Fe)的表征第32-34页
        2.3.2 MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶活性第34-38页
        2.3.3 该葡萄糖检测方法的分析特性及应用第38-40页
    2.4 小结第40-41页
第3章 甘氨酸修饰的MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶特性及其在葡萄糖测定中的应用第41-53页
    3.1 引言第41-42页
    3.2 实验部分第42-44页
        3.2.1 化学试剂第42页
        3.2.2 仪器第42页
        3.2.3 MIL-53(Fe)和Glycine-MIL-53(Fe)的制备第42-43页
        3.2.4 MIL-53(Fe)和Glycine-MIL-53(Fe)的稳定性第43页
        3.2.5 基于Glycine-MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶特性检测H2O2的步骤第43页
        3.2.6 动力学分析第43页
        3.2.7 血清样本中的葡萄糖分析第43-44页
    3.3 结果与讨论第44-52页
        3.3.1 Glycine-MIL-53(Fe)的表征第44-45页
        3.3.2 Glycine-MIL-53(Fe)的过氧化物模拟酶活性和稳定性评估第45-49页
        3.3.3 Glycine-MIL-53(Fe)催化活性的影响因素第49-50页
        3.3.4 基于Glycine-MIL-53(Fe)MOFs模拟酶特性检测血糖第50-52页
    3.4 小结第52-53页
第4章 Ce-MOF衍生的CeO_2/C纳米线的过氧化物模拟酶特性及其生物传感应用第53-69页
    4.1 引言第53-54页
    4.2 实验部分第54-56页
        4.2.1 试剂和仪器第54页
        4.2.2 二氧化铈基纳米材料的制备第54-55页
        4.2.3 评估CeO_2/C纳米线的过氧化物酶活性和稳定性的步骤第55页
        4.2.4 动力学研究步骤第55页
        4.2.5 实际血样中葡萄糖测定步骤第55-56页
    4.3 结果与讨论第56-67页
        4.3.1 CeO_2/C纳米线的表征第56-59页
        4.3.2 CeO_2/C纳米线的过氧化物模拟酶特性第59-60页
        4.3.3 CeO_2/C纳米线煅烧温度的优化第60-61页
        4.3.4 CeO_2/C纳米线的稳定性第61-62页
        4.3.5 动力学分析第62-63页
        4.3.6 CeO_2/C过氧化物模拟酶活性测定H2O2的条件优化第63-64页
        4.3.7 葡萄糖的测定第64-67页
    4.4 小结第67-69页
第5章 金属有机框架衍生的多孔碳负载钴纳米的过氧化物模拟酶特性及其生物传感应用第69-87页
    5.1 引言第69-70页
    5.2 实验部分第70-72页
        5.2.1 试剂和仪器第70页
        5.2.2 NH_2-MIL-88(Fe)和CoNPs/MC的制备第70-71页
        5.2.3 评估CoNPs/MC的过氧化物酶活性和稳定性的步骤第71页
        5.2.4 动力学研究步骤第71页
        5.2.5 实际血样中葡萄糖测定步骤第71-72页
    5.3 结果与讨论第72-85页
        5.3.1 CoNPs/MC的合成及表征第72-75页
        5.3.2 CoNPs/MC的过氧化物模拟酶活性第75-77页
        5.3.3 CoNPs/MC催化反应过程中的活性组分第77-78页
        5.3.4 CoNPs/MC协同的过氧化物模拟酶活性的可能原因分析第78页
        5.3.5 动力学分析第78-80页
        5.3.6 CoNPs/MC过氧化物模拟酶的稳定性第80页
        5.3.7 CoNPs/MC过氧化物模拟酶活性测定H2O2的条件优化第80-83页
        5.3.8 基于CoNPs/MC纳米酶检测血糖第83-85页
    5.4 小结第85-87页
全文总结与展望第87-89页
参考文献第89-109页
读博士学位期间的研究成果第109-111页
致谢第111页

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