| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 中英文缩略词索引 | 第10-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-20页 |
| 第2章 材料与方法 | 第20-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第20页 |
| 2.1.2 RITA | 第20页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第20-21页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.5 主要试剂配制 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.2.1 体外细胞培养 | 第23页 |
| 2.2.2 WesternBlot检测 | 第23-25页 |
| 2.2.3 CCK-8检测RITA药物对Raji细胞的剂量与时间效应 | 第25-26页 |
| 2.2.4 CCK-8检测细胞生长 | 第26页 |
| 2.2.5 迁移实验 | 第26页 |
| 2.2.6 侵袭实验 | 第26-27页 |
| 2.2.7 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第27页 |
| 2.2.8 基因测序检测p53突变 | 第27页 |
| 2.2.9 qRT-PCR检测 | 第27-29页 |
| 2.2.10 统计学分析 | 第29-30页 |
| 第3章 结果 | 第30-48页 |
| 3.1 PLK1低表达的Raji细胞的培养 | 第30-33页 |
| 3.1.1 荧光显微镜观察的结果 | 第30页 |
| 3.1.2 WesternBlot检测PLK1蛋白表达 | 第30-31页 |
| 3.1.3 qRT-PCR检测PLK1mRNA表达 | 第31-33页 |
| 3.2 不同浓度的RITA药物在不同时相点对Raji细胞的抑制作用 | 第33-34页 |
| 3.3 RITA和PLK1低表达对Raji细胞生物学行为的影响 | 第34-38页 |
| 3.3.1 CCK-8实验 | 第34-35页 |
| 3.3.2 迁移实验 | 第35-36页 |
| 3.3.3 侵袭实验 | 第36-37页 |
| 3.3.4 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第37-38页 |
| 3.4 Raji细胞内p53基因测序结果 | 第38-39页 |
| 3.5 qRT-PCR检测相关基因mRNA水平 | 第39-45页 |
| 3.6 WesternBlot检测相关基因蛋白水平 | 第45-48页 |
| 第4章 讨论 | 第48-54页 |
| 第5章 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 文献综述 | 第62-72页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第72-74页 |
| 本研究课题资助项目 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
