| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 引言 | 第15-18页 |
| 第一部分 移植瘤模型肿瘤微环境Tregs活性特征 | 第18-29页 |
| 1. 材料与方法 | 第18-25页 |
| 1.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.1.2 细胞株 | 第18页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第18-19页 |
| 1.1.4 主要仪器设备 | 第19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-25页 |
| 1.2.1 细胞培养液的配制 | 第19-20页 |
| 1.2.2 实验用试剂的配制 | 第20页 |
| 1.2.3 细胞培养 | 第20-21页 |
| 1.2.4 细胞计数 | 第21页 |
| 1.2.5 接种用细胞悬浊液的制备 | 第21页 |
| 1.2.6 裸鼠移植瘤的制备 | 第21-22页 |
| 1.2.7 病理形态学观察 | 第22-23页 |
| 1.2.8 免疫组化染色标本的制备 | 第23-25页 |
| 1.3 统计学方法 | 第25页 |
| 2. 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.1 鼻咽癌CNE2细胞移植瘤常规病理组织学特征 | 第25-26页 |
| 2.2 鼻咽癌CNE2细胞移植瘤组织Tregs活性特征 | 第26-27页 |
| 3. 小结 | 第27-29页 |
| 第二部分 益气解毒方对移植瘤模型肿瘤微环境Tregs活性的影响及机制研究 | 第29-53页 |
| 1. 材料与方法 | 第29-39页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第29-31页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第29页 |
| 1.1.2 细胞株 | 第29页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第29-31页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第31-32页 |
| 1.3 实验方法 | 第32-39页 |
| 1.3.1 实验用药和试剂的制备 | 第32页 |
| 1.3.2 裸鼠移植瘤的制备、分组和处理 | 第32-33页 |
| 1.3.3 免疫组织化学染色法 | 第33页 |
| 1.3.4 RT-PCR法 | 第33-37页 |
| 1.3.5 Western blot法 | 第37-39页 |
| 1.4 统计学方法 | 第39页 |
| 2. 结果与分析 | 第39-50页 |
| 2.1 各组动物的病理组织学特点 | 第39-42页 |
| 2.1.1 各组动物肿瘤生长情况、瘤重及抑瘤率比较 | 第39-41页 |
| 2.1.2 各组移植瘤病理组织学特点 | 第41-42页 |
| 2.2 益气解毒方对裸鼠移植瘤组织中Tregs活性的影响(×400) | 第42-45页 |
| 2.3 益气解毒方影响肿瘤微环境Tregs细胞活性作用机制研究 | 第45-49页 |
| 2.3.1 免疫组化法实验结果综合分析 | 第45页 |
| 2.3.2 RT-PCR法的结果与分析 | 第45-49页 |
| 2.4 各组裸鼠移植瘤组织中CD4、CD8、Foxp3、IL-10和TGF-β蛋白表达的western blotting验证 | 第49-50页 |
| 3. 小结 | 第50-53页 |
| 第三部分 讨论 | 第53-59页 |
| 第四部分 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 文献综述 | 第64-76页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
