| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 文献回顾 | 第17-24页 |
| 第一部分 LPS系统性炎症诱发的小鼠焦虑样行为中CXCL12表达的变化 | 第24-36页 |
| 实验一 LPS介导动物焦虑样行为 | 第24-28页 |
| 1 材料 | 第24-25页 |
| 1.1 实验动物 | 第24页 |
| 1.2 主要试剂 | 第24页 |
| 1.3 主要仪器 | 第24-25页 |
| 2 方法 | 第25-26页 |
| 2.1 实验动物分组处理 | 第25页 |
| 2.2 高架十字迷宫实验 | 第25页 |
| 2.3 旷场试验 | 第25-26页 |
| 3 结果 | 第26-28页 |
| 实验二 LPS介导脑内CXCL12的表达 | 第28-33页 |
| 1 材料 | 第28-29页 |
| 1.1 实验动物 | 第28页 |
| 1.2 主要试剂 | 第28页 |
| 1.3 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2 方法 | 第29-30页 |
| 2.1 Western blot检测 | 第29-30页 |
| 2.2 ELISA检测 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-33页 |
| 实验三 LPS介导脑内炎症 | 第33-36页 |
| 1 材料 | 第33页 |
| 1.1 实验动物 | 第33页 |
| 1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 1.3 主要仪器 | 第33页 |
| 2 方法 | 第33-34页 |
| 2.1 脑片制备 | 第33-34页 |
| 2.2 荧光染色 | 第34页 |
| 3 结果 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-36页 |
| 第二部分 LPS通过CXCL12/CXCR4介导小鼠焦虑样行为 | 第36-44页 |
| 实验一 CXCL12诱发动物焦虑样行为的实验 | 第36-41页 |
| 1 材料 | 第36页 |
| 1.1 实验动物 | 第36页 |
| 1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 2 方法 | 第36-38页 |
| 2.1 实验动物分组处理 | 第36-37页 |
| 2.2 杏仁核BLA区脑立体定位手术 | 第37页 |
| 2.3 局部微量注射 | 第37页 |
| 2.4 苏木精染色 | 第37-38页 |
| 2.5 高架十字迷宫实验 | 第38页 |
| 2.6 旷场试验 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-41页 |
| 3.1 确认杏仁核位置 | 第38页 |
| 3.2 CXCL12通过其受体CXCR4介导诱发小鼠焦虑样行为 | 第38-41页 |
| 实验二 CXCL12/CXCR4介导LPS诱发的动物焦虑样行为 | 第41-44页 |
| 1 材料 | 第41页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 主要试剂 | 第41页 |
| 1.3 主要仪器 | 第41页 |
| 2 方法 | 第41页 |
| 2.1 实验动物分组处理 | 第41页 |
| 2.2 高架十字迷宫实验 | 第41页 |
| 2.3 旷场试验 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 第三部分 下调CXCR4受体表达缓解由杏仁核区CXCL12激活引起的小鼠焦虑样行为 | 第44-52页 |
| 1 材料 | 第44-45页 |
| 1.1 实验动物 | 第44页 |
| 1.2 主要试剂 | 第44页 |
| 1.3 主要仪器 | 第44-45页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第45页 |
| 2 方法 | 第45-48页 |
| 2.1 构建表达CXCR4受体sh RNA慢病毒载体 | 第45-46页 |
| 2.2 神经元的原代培养 | 第46页 |
| 2.3 细胞转染 | 第46页 |
| 2.4 BLA局部微量注射 | 第46页 |
| 2.5 病毒感染率及转染效率的检测 | 第46-47页 |
| 2.6 实验动物处理 | 第47页 |
| 2.7 高架十字迷宫实验 | 第47-48页 |
| 2.8 旷场试验 | 第48页 |
| 3 结果 | 第48-50页 |
| 3.1 LV-sh CXCR4高效感染培养的神经元并下调CXCR4的表达 | 第48页 |
| 3.2 LV-sh CXCR4有效感染杏仁核BLA区并下调CXCR4的表达水平 | 第48-49页 |
| 3.3 下调CXCR4的表达可改善CXCL12引起的小鼠焦虑样行为 | 第49-50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| 第四部分 CXCL12对自发性兴奋性突触后电流的影响 | 第52-57页 |
| 1 材料 | 第52-53页 |
| 1.1 实验动物 | 第52页 |
| 1.2 主要试剂 | 第52-53页 |
| 1.3 主要仪器 | 第53页 |
| 2 方法 | 第53-54页 |
| 2.1 杏仁核BLA区脑片的制备 | 第53页 |
| 2.2 记录电极的拉制 | 第53页 |
| 2.3 全细胞膜片钳记录 | 第53-54页 |
| 3 结果 | 第54-55页 |
| 3.1 CXCL12对s EPSC的影响。 | 第54-55页 |
| 4 讨论 | 第55-57页 |
| 小结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-69页 |
| 个人简历与研究成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
