猪血红蛋白活性肽的膜分离方法的研究
摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
1 综述 | 第8-19页 |
1.1 猪血及其利用现状 | 第8-10页 |
1.1.1 猪血简介 | 第8页 |
1.1.2 猪血的开发利用现状 | 第8-10页 |
1.2 血红蛋白及血红蛋白肽 | 第10-12页 |
1.2.1 血红蛋白结构 | 第10-11页 |
1.2.2 血红蛋白肽的功能活性 | 第11-12页 |
1.3 ACE作用机理 | 第12-15页 |
1.3.1.高血压简介 | 第12页 |
1.3.2 血管紧张素I转化酶 | 第12-13页 |
1.3.3 ACE对血压的调节作用 | 第13页 |
1.3.4 ACE抑制肽的降血压机理 | 第13页 |
1.3.5 ACE抑制活性肽的结构特点 | 第13页 |
1.3.6 ACE生物活性肽的研究现状 | 第13-15页 |
1.4 生物活性肽的分离提取方法 | 第15-16页 |
1.4.1 超滤技术 | 第15页 |
1.4.2 凝胶层析技术 | 第15页 |
1.4.3 离子交换层析 | 第15页 |
1.4.4 高效液相层析 | 第15-16页 |
1.4.5 多种分离纯化技术结合应用 | 第16页 |
1.5 膜分离技术与应用 | 第16-18页 |
1.5.1 膜分离技术简介 | 第16-17页 |
1.5.2 膜分离技术的主要形式 | 第17页 |
1.5.3 膜分离技术应用 | 第17-18页 |
1.6 本课题研究的目的及主要内容 | 第18-19页 |
2 血红蛋白活性肽的制备分离 | 第19-25页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第19页 |
2.1.1 材料与试剂 | 第19页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第19页 |
2.2 分析方法 | 第19-21页 |
2.2.1 蛋白水解度测定 | 第19-20页 |
2.2.2 蛋白水解产物ACE抑制活性测定 | 第20页 |
2.2.3 胃蛋白酶活力的测定 | 第20页 |
2.2.4 血红蛋白粉氨基酸含量测定 | 第20-21页 |
2.3 实验方法 | 第21页 |
2.3.1 原料基本成分含量测定 | 第21页 |
2.3.2 猪血红蛋白活性肽制备分离 | 第21页 |
2.4 结果与分析 | 第21-24页 |
2.4.1 基本成分测定结果 | 第21-22页 |
2.4.2 胃蛋白酶活力 | 第22页 |
2.4.3 酶解液水解度测定 | 第22页 |
2.4.4 超滤所得各部分所占比例及ACE抑制率 | 第22-23页 |
2.4.5 超滤对水解产物的脱色作用 | 第23-24页 |
2.4.6 氨基酸含量分析 | 第24页 |
2.5 本章小结 | 第24-25页 |
3 超滤分离ACE抑制肽条件的优化 | 第25-34页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第25页 |
3.1.1 实验材料与试剂 | 第25页 |
3.1.2 实验设备 | 第25页 |
3.2 分析方法 | 第25页 |
3.3 实验方法 | 第25-27页 |
3.3.1 不同因素对膜通量的影响 | 第26页 |
3.3.2 膜清洗 | 第26-27页 |
3.4 结果与分析 | 第27-32页 |
3.4.1 超滤时间对膜通量的影响 | 第27-28页 |
3.4.2 操作压力对膜通量的影响 | 第28-30页 |
3.4.3 超滤温度对膜通量的影响 | 第30-31页 |
3.4.4 料液pH对膜通量的影响 | 第31-32页 |
3.5 膜组件的清洗 | 第32-33页 |
3.6 本章小结 | 第33-34页 |
4 多次酶解制备活性肽 | 第34-44页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第34页 |
4.2 实验方法 | 第34-35页 |
4.2.1 二次酶解 | 第34-35页 |
4.2.2 三次酶解 | 第35页 |
4.3 结果分析 | 第35-43页 |
4.3.1 二次酶解 | 第35-40页 |
4.3.2 三次酶解 | 第40-43页 |
4.4 本章小结 | 第43-44页 |
5 活性肽中有效成分含量测定 | 第44-47页 |
5.1 实验材料和设备 | 第44页 |
5.2 实验方法 | 第44-45页 |
5.2.1 多肽液及标准品配制 | 第44页 |
5.2.2 ACE抑制肽的RP-HPLC分离 | 第44-45页 |
5.3 实验结果 | 第45-46页 |
5.3.1 洗脱方法的确立 | 第45页 |
5.3.2 有效成分多肽的确定 | 第45-46页 |
5.4 本章小结 | 第46-47页 |
6 结论 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-52页 |
攻读学位期间发表的学术成果 | 第52-55页 |
致谢 | 第55页 |