| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一章 高碳酸血症对低氧状态下SD大鼠认知功能的影响 | 第15-21页 |
| 1 实验目的 | 第15页 |
| 2 实验动物及材料 | 第15-16页 |
| 2.1 实验动物 | 第15页 |
| 2.2 实验材料 | 第15-16页 |
| 3 实验方法 | 第16-17页 |
| 3.1 实验动物分组 | 第16页 |
| 3.2 大鼠低氧血症和(或)高碳酸血症模型制作 | 第16页 |
| 3.3 Morris水迷宫评估低氧血症和(或)高碳酸血症对SD大鼠认知功能的影响 | 第16-17页 |
| 3.4 统计方法 | 第17页 |
| 4 实验结果 | 第17-19页 |
| 4.1 5%CO_2和16% O_2干预对SD大鼠动脉血PO_2、PCO_2和pH变化的影响 | 第17-18页 |
| 4.2 Morris水迷宫检测高碳酸血症对低氧状态下SD大鼠空间记忆能力影响 | 第18-19页 |
| 5 实验讨论 | 第19-20页 |
| 6 实验结论 | 第20-21页 |
| 第二章 高碳酸血症对低氧状态下SD大鼠海马NLRP3炎症小体活化及IL-1β表达的影响 | 第21-34页 |
| 1 实验目的 | 第21页 |
| 2 实验动物及材料 | 第21-25页 |
| 2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.3 实验试剂配置 | 第23-25页 |
| 3 实验方法 | 第25-30页 |
| 3.1 实验动物分组 | 第25页 |
| 3.2 大鼠低氧血症和(或)高碳酸血症模型制作 | 第25页 |
| 3.3 Western Blot法检测高碳酸血症对低氧状态下海马NLRP3炎症小体活化及IL-1β表达的影响 | 第25-29页 |
| 3.4 免疫双荧光法检测高碳酸血症对低氧激活的海马小胶质细胞IL-1β表达的影响 | 第29页 |
| 3.5 统计方法 | 第29-30页 |
| 4 实验结果 | 第30-33页 |
| 4.1 高碳酸血症对低氧状态下SD大鼠海马小胶质细胞NLRP3炎症小体活化的影响 | 第30-31页 |
| 4.2 高碳酸血症对低氧状态下SD大鼠海马小胶质细胞IL-1β表达的影响 | 第31-33页 |
| 5 实验讨论 | 第33页 |
| 6 实验结论 | 第33-34页 |
| 第三章 高碳酸血症对低氧状态下SD大鼠海马神经元凋亡的影响 | 第34-41页 |
| 1 实验目的 | 第34页 |
| 2 实验动物及材料 | 第34-35页 |
| 2.1 实验动物 | 第34页 |
| 2.2 实验材料 | 第34-35页 |
| 2.3 实验试剂配置 | 第35页 |
| 3 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.1 实验动物分组 | 第35-36页 |
| 3.2 大鼠低氧血症和(或)高碳酸血症模型制作 | 第36页 |
| 3.3 Western Blot法检测高碳酸血症对低氧状态下海马凋亡相关蛋白表达的影响 | 第36-37页 |
| 3.4 免疫双荧光法检测高碳酸血症对低氧激活的海马神经元caspase-3表达的影响 | 第37页 |
| 3.5 统计方法 | 第37页 |
| 4 实验结果 | 第37-40页 |
| 5 实验讨论 | 第40页 |
| 6 实验结论 | 第40-41页 |
| 第四章 高浓度CO_2对低氧激活的小胶质细胞NLRP3炎症小体活化及IL-1β表达的影响 | 第41-55页 |
| 1 实验目的 | 第41页 |
| 2 实验细胞及材料 | 第41-43页 |
| 2.1 实验细胞 | 第41页 |
| 2.2 实验材料 | 第41-43页 |
| 2.3 实验试剂配置 | 第43页 |
| 3 实验方法 | 第43-47页 |
| 3.1 实验动物分组 | 第43页 |
| 3.2 BV-2小胶质细胞培养 | 第43页 |
| 3.3 BV-2小胶质细胞的鉴定方法 | 第43-44页 |
| 3.4 Western Blot法检测高浓度CO_2对低氧激活的BV-2小胶质细胞NLRP3炎症小体活化、IL-1β蛋白表达水平的影响 | 第44-46页 |
| 3.5 免疫双荧光法检测高浓度CO_2对低氧激活的BV-2小胶质细胞IL-1β表达的影响 | 第46-47页 |
| 3.6 统计方法 | 第47页 |
| 4 实验结果 | 第47-54页 |
| 5 实验讨论 | 第54页 |
| 6 实验结论 | 第54-55页 |
| 第五章 低氧和(或)高浓度CO_2干预过的小胶质细胞培养基对原代神经元凋亡的影响 | 第55-65页 |
| 1 实验目的 | 第55页 |
| 2 实验细胞及材料 | 第55-58页 |
| 2.1 实验动物和细胞 | 第55页 |
| 2.2 实验材料 | 第55-57页 |
| 2.3 实验试剂配置 | 第57-58页 |
| 3 实验方法 | 第58-61页 |
| 3.1 BV-2小胶质细胞条件培养基的制备 | 第58页 |
| 3.2 原代神经元的培养和分组 | 第58-59页 |
| 3.3 原代神经元细胞鉴定的方法 | 第59页 |
| 3.4 Western Blot法检测低氧和(或)高浓度CO_2干预过的小胶质细胞培养基对原代神经元凋亡相关蛋白表达的影响 | 第59-60页 |
| 3.5 统计方法 | 第60-61页 |
| 4 实验结果 | 第61-63页 |
| 5 实验讨论 | 第63-64页 |
| 6 实验结论 | 第64-65页 |
| 全文总结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
