| 致谢 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 缩略语表 | 第11-15页 |
| 1 课题背景 | 第15-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-30页 |
| 2.1 材料 | 第17-19页 |
| 2.1.1 细胞来源 | 第17页 |
| 2.1.2 动物来源 | 第17页 |
| 2.1.3 主要仪器及耗材 | 第17-18页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.2 方法 | 第19-30页 |
| 2.2.1 糖尿病视网膜病变动物模型 | 第19-21页 |
| 2.2.2 囊外晶体摘除术动物模型 | 第21页 |
| 2.2.3 实时荧光定量PCR | 第21-26页 |
| 2.2.4 Western blot免疫印迹实验 | 第26-28页 |
| 2.2.5 免疫荧光染色和视网膜铺片 | 第28-29页 |
| 2.2.6 数据统计分析 | 第29-30页 |
| 3 实验结果 | 第30-47页 |
| 3.1 糖尿病视网膜病变小鼠眼内的慢性炎症反应 | 第30-32页 |
| 3.1.1 糖尿病小鼠的血糖和体重 | 第30-31页 |
| 3.1.2 糖尿病小鼠的眼底血管造影 | 第31页 |
| 3.1.3 糖尿病小鼠视网膜的基础炎症因子水平 | 第31-32页 |
| 3.2 晶体摘除术引起视网膜的急性炎症反应 | 第32-38页 |
| 3.2.1 ECLE引起小鼠视网膜急性炎症反应 | 第32-35页 |
| 3.2.2 ECLE对视网膜的影响在NPDR和PDR组的差异 | 第35-38页 |
| 3.3 ECLE引起PDR小鼠中血视网膜屏障的破坏 | 第38-40页 |
| 3.3.1 ECLE引起PDR组血视网膜屏障的破坏 | 第38-39页 |
| 3.3.2 ECLE下调紧密连接蛋白的表达 | 第39-40页 |
| 3.4 ECLE术后视网膜内的小胶质细胞 | 第40-42页 |
| 3.4.1 ELCE引起视网膜内小胶质细胞的活化 | 第40-42页 |
| 3.4.2 ECLE术后糖尿病小鼠视网膜内MG的极化分布 | 第42页 |
| 3.5 ECLE术后信号通路的激活情况 | 第42-44页 |
| 3.5.1 NPDR和PDR小鼠术后视网膜内转录因子的表达水平 | 第42-43页 |
| 3.5.2 ECLE术后MG为MCP-1的主要细胞来源 | 第43-44页 |
| 3.6 BV2细胞实验 | 第44-47页 |
| 3.6.1 BV2细胞在高糖环境和LPS刺激下的行为 | 第44-46页 |
| 3.6.2 BV2细胞中MCP-1激活通路的抑制实验研究 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 综述 | 第52-59页 |
| 参考文献 | 第59-68页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第68页 |
