| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-16页 |
| 1.1 研究工作的背景与意义 | 第11-14页 |
| 1.2 辛伐他汀在促进细胞成骨效能的国内外研究历史与现状 | 第14页 |
| 1.3 本文的主要贡献与创新 | 第14-15页 |
| 1.4 本论文的结构安排 | 第15-16页 |
| 第二章 纳米脂质体质量的定量评价 | 第16-19页 |
| 2.1 材料和方法 | 第16-17页 |
| 2.1.1 实验材料和设备 | 第16页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第16-17页 |
| 2.2 实验结果 | 第17页 |
| 2.3 本章小结 | 第17-19页 |
| 第三章 载SIM纳米脂质体和单纯SIM溶液释放的差异性评价 | 第19-23页 |
| 3.1 实验材料和设备 | 第19页 |
| 3.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 3.3 实验结果 | 第21页 |
| 3.4 本章小结 | 第21-23页 |
| 第四章 载辛伐他汀纳米脂质体对3种不同条件构建的组织工程成骨相关基因表达量的影响 | 第23-30页 |
| 4.1 细胞的传代与培养 | 第23-25页 |
| 4.1.1 实验材料和设备 | 第23-24页 |
| 4.1.1.1 多孔HA陶瓷支架（8mm x 3mm） | 第23页 |
| 4.1.1.2 主要生化试剂 | 第23页 |
| 4.1.1.3 实验仪器和设备 | 第23-24页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第24-25页 |
| 4.1.2.1 多孔羟基磷灰石(HA)陶瓷支架的制备 | 第24-25页 |
| 4.1.2.2 细胞培养及传代 | 第25页 |
| 4.1.2.3 细胞计数 | 第25页 |
| 4.2 构建PMSCS/多孔HA陶瓷支架复合体 | 第25-28页 |
| 4.2.1 转录组基因水平检测 | 第27-28页 |
| 4.2.1.1 提取RNA | 第27页 |
| 4.2.1.2 将提取的RNA进行基因水平检测 | 第27-28页 |
| 4.3 实验结果 | 第28-29页 |
| 4.4 本章小结 | 第29-30页 |
| 第五章 对成骨相关基因在3个不同时间点表达量的差异性评价 | 第30-42页 |
| 5.1 实验材料 | 第30-32页 |
| 5.1.1 实验试剂 | 第30页 |
| 5.1.2 实验设备 | 第30-32页 |
| 5.2 WESTERNBLOT检测 | 第32-34页 |
| 5.2.1 蛋白提取 | 第32页 |
| 5.2.2 BCA试剂盒测定细胞总蛋白 | 第32-33页 |
| 5.2.3 SDS-PAGE电泳 | 第33-34页 |
| 5.3 荧光定量PCR检测 | 第34-36页 |
| 5.3.1 提取RNA | 第34页 |
| 5.3.2 逆转录 | 第34页 |
| 5.3.3 PCR反应 | 第34-36页 |
| 5.4 实验结果 | 第36-40页 |
| 5.4.1 WESTERNBLOT实验结果 | 第36-37页 |
| 5.4.2 荧光定量PCR实验结果 | 第37-40页 |
| 5.4.2.1 横向对比结果 | 第37-38页 |
| 5.4.2.2 纵向对比结果 | 第38-40页 |
| 5.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第42-44页 |
| 6.1 全文总结 | 第42-43页 |
| 6.2 后续工作展望 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 攻读硕士学位期间取得的成果 | 第50页 |
