摘要 | 第3-8页 |
ABSTRACT | 第8-12页 |
缩略词表 | 第14-18页 |
第1章 前言 | 第18-22页 |
1.1 引言 | 第18-19页 |
1.2 CYP3A和 P-gp 对 CsA的代谢和转运 | 第19-20页 |
1.3 PXR等核受体对 CYP3A和 P-gp 的调控作用 | 第20-21页 |
1.4 本课题的实验设计 | 第21-22页 |
第2章 黄连素对大鼠体内 CYP3A活性影响的研究 | 第22-38页 |
2.1 材料 | 第22-23页 |
2.1.1 主要仪器与设备 | 第22-23页 |
2.1.2 主要药品与试剂 | 第23页 |
2.1.3 实验动物 | 第23页 |
2.2 方法 | 第23-27页 |
2.2.1 溶液的配制 | 第23-24页 |
2.2.2 MDZ 及其代谢产物 1ˊ-OH-MDZ HPLC 分析方法建立 | 第24-25页 |
2.2.3 MDZ 及其代谢产物 1ˊ-OH-MDZ HPLC 分析方法评价 | 第25-26页 |
2.2.4 测定 BBR 对大鼠 MDZ 代谢的药代动力学参数的影响 | 第26-27页 |
2.2.5 统计分析 | 第27页 |
2.3 结果 | 第27-36页 |
2.3.1 MDZ 及其代谢产物 1ˊ-OH-MDZ HPLC 分析方法评价结果 | 第27-32页 |
2.3.2 BBR 对大鼠 MDZ 代谢的药代动力学参数的影响及比较 | 第32-36页 |
2.4 小结与讨论 | 第36-38页 |
第3章 黄连素对大鼠体内 P-糖蛋白活性影响的研究 | 第38-49页 |
3.1 材料 | 第38-39页 |
3.1.1 主要仪器与设备 | 第38-39页 |
3.1.2 主要药品与试剂 | 第39页 |
3.1.3 实验动物 | 第39页 |
3.2 方法 | 第39-42页 |
3.2.1 溶液的配制 | 第39页 |
3.2.2 大鼠血浆中 Rh123 HPLC 分析方法建立 | 第39-40页 |
3.2.3 大鼠血浆中 Rh123 HPLC 分析方法评价 | 第40-41页 |
3.2.4 测定 BBR 对大鼠 Rh123代谢的药代动力学参数的影响 | 第41-42页 |
3.2.5 统计分析 | 第42页 |
3.3 结果 | 第42-47页 |
3.3.1 大鼠血浆中 Rh123 HPLC 分析方法评价结果 | 第42-45页 |
3.3.2 BBR 对大鼠 Rh123代谢的药代动力学参数的影响及比较 | 第45-47页 |
3.4 小结与讨论 | 第47-49页 |
第4章 黄连素对 HepG2 细胞 CYP3A4和 P-糖蛋白的影响和作用机制研究 | 第49-70页 |
4.1 材料 | 第49-51页 |
4.1.1 主要仪器与设备 | 第49-50页 |
4.1.2 主要药品与试剂 | 第50页 |
4.1.3 人肝癌细胞 HepG234 | 第50-51页 |
4.2 方法 | 第51-57页 |
4.2.1 主要溶液配置 | 第51页 |
4.2.2 HepG2 细胞复苏传代冻存 | 第51-52页 |
4.2.3 HepG2 细胞生长曲线建立 | 第52页 |
4.2.4 BBR 对 HepG2 细胞毒性试验 | 第52页 |
4.2.5 分组及给药 | 第52-53页 |
4.2.6 Western Blotting 检测目的基因蛋白的表达 | 第53-54页 |
4.2.7 RTQ-PCR检测目的基因以及上游调控基因 mRNA水平的表达·38 | 第54-57页 |
4.2.8 统计分析 | 第57页 |
4.3 结果 | 第57-67页 |
4.3.1 HepG2 细胞生长曲线 | 第57页 |
4.3.2 BBR 对 HepG2 细胞毒性试验结果 | 第57-59页 |
4.3.3 蛋白浓度标准曲线 | 第59页 |
4.3.4 BBR 对 HepG2 细胞 CYP3A4和 P-gp 蛋白表达水平的影响 | 第59-62页 |
4.3.5 BBR 对 HepG2 细胞 CYP3A4 和 MDR1 及上游调控基因 mRNA表达水平的影响 | 第62-67页 |
4.4 小结与讨论 | 第67-70页 |
第5章 结论与展望 | 第70-72页 |
5.1 结论 | 第70页 |
5.2 展望 | 第70-72页 |
参考文献 | 第72-76页 |
致谢 | 第76-77页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第77-78页 |
综述 | 第78-89页 |
参考文献 | 第86-89页 |