| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第15-30页 |
| 1 微生物多糖研究概况 | 第16-22页 |
| 1.1 微生物多糖概念及分类 | 第16-17页 |
| 1.2 微生物多糖的生产状况 | 第17页 |
| 1.3 商业生产中几种重要的微生物多糖 | 第17-22页 |
| 1.3.1 细菌发酵产生的多糖 | 第17-20页 |
| 1.3.2 真菌发酵产生的多糖 | 第20-22页 |
| 2 海洋微生物胞外多糖的研究 | 第22-29页 |
| 2.1 微生物多糖的结构研究 | 第23-24页 |
| 2.1.1 海洋细菌产胞外多糖结构研究 | 第23页 |
| 2.1.2 海洋真菌产胞外多糖结构研究 | 第23-24页 |
| 2.1.3 海洋放线菌产胞外多糖结构研究 | 第24页 |
| 2.2 微生物多糖的提取、分离纯化研究方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 微生物多糖的提取 | 第24页 |
| 2.2.2 微生物多糖的分离纯化 | 第24-25页 |
| 2.2.3 微生物多糖的纯度及分子量分析 | 第25页 |
| 2.3 微生物多糖的结构研究方法 | 第25-28页 |
| 2.3.1 多糖的单糖组成分析 | 第26页 |
| 2.3.2 多糖的红外光谱分析 | 第26页 |
| 2.3.3 多糖的甲基化分析 | 第26-27页 |
| 2.3.4 多糖的核磁共振分析 | 第27页 |
| 2.3.5 多糖的高级结构分析 | 第27-28页 |
| 2.4 微生物多糖的活性研究 | 第28-29页 |
| 2.4.1 微生物多糖的免疫调节活性 | 第28页 |
| 2.4.2 微生物多糖的抗肿瘤活性 | 第28-29页 |
| 2.4.3 微生物多糖的抗病毒活性 | 第29页 |
| 3 本课题的研究背景及意义 | 第29-30页 |
| 第一章 辽东湾海泥放线菌 Streptomyces sp.产胞外多糖的分离纯化及结构研究 | 第30-55页 |
| 1 引言 | 第30页 |
| 2 实验材料 | 第30-32页 |
| 2.1 实验原料 | 第30页 |
| 2.2 实验试剂与材料 | 第30-31页 |
| 2.3 实验仪器 | 第31-32页 |
| 3 实验方法 | 第32-42页 |
| 3.1 胞外多糖粗品的提取 | 第32-33页 |
| 3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第33-34页 |
| 3.2.1 离子交换柱层析 | 第33-34页 |
| 3.2.2 凝胶渗透柱层析 | 第34页 |
| 3.3 胞外多糖的理化性质分析 | 第34-38页 |
| 3.3.1 总糖含量分析 | 第34-35页 |
| 3.3.2 蛋白含量分析 | 第35-36页 |
| 3.3.3 糖醛酸含量分析 | 第36页 |
| 3.3.4 硫酸基含量分析 | 第36-37页 |
| 3.3.5 氨基糖含量分析 | 第37-38页 |
| 3.4 胞外多糖的纯度及分子量分析 | 第38页 |
| 3.5 胞外多糖的单糖组成分析 | 第38-40页 |
| 3.5.1 多糖样品完全酸水解 | 第39页 |
| 3.5.2 多糖样品的 PMP 衍生 | 第39页 |
| 3.5.3 色谱检测条件 | 第39-40页 |
| 3.6 胞外多糖的红外光谱分析 | 第40页 |
| 3.7 胞外多糖的甲基化分析 | 第40-42页 |
| 3.7.1 试剂前处理 | 第40页 |
| 3.7.2 甲基化反应 | 第40-41页 |
| 3.7.3 甲基化多糖的 IR 光谱分析 | 第41页 |
| 3.7.4 甲基化多糖的酸水解 | 第41页 |
| 3.7.5 水解样品的还原 | 第41页 |
| 3.7.6 还原样品的乙酰化 | 第41-42页 |
| 3.7.7 GC-MS 分析 | 第42页 |
| 3.8 胞外多糖的核磁共振波谱分析 | 第42页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第42-54页 |
| 4.1 胞外多糖的提取 | 第42-43页 |
| 4.2 胞外多糖的分离纯化 | 第43-44页 |
| 4.2.1 离子交换柱层析 | 第43页 |
| 4.2.2 凝胶渗透柱层析 | 第43-44页 |
| 4.3 胞外多糖的化学组成分析 | 第44-45页 |
| 4.4 胞外多糖的纯度及分子量分析 | 第45-46页 |
| 4.5 胞外多糖的单糖组成分析 | 第46-48页 |
| 4.5.1 粗品胞外多糖的单糖组成分析 | 第46-47页 |
| 4.5.2 纯品多糖的单糖组成分析 | 第47-48页 |
| 4.6 胞外多糖的红外光谱分析 | 第48页 |
| 4.7 胞外多糖的甲基化分析 | 第48-51页 |
| 4.7.1 甲基化原理 | 第48-49页 |
| 4.7.2 甲基化多糖的 IR 分析 | 第49-50页 |
| 4.7.3 GC-MS 分析 | 第50-51页 |
| 4.8 胞外多糖的核磁共振波谱分析 | 第51-54页 |
| 5 本章小结 | 第54-55页 |
| 第二章 渤海海泥放线菌 Streptomyces sp.产胞外多糖的分离纯化及结构研究 | 第55-70页 |
| 1 引言 | 第55页 |
| 2 实验材料 | 第55-56页 |
| 2.1 实验原料 | 第55页 |
| 2.2 实验试剂与材料 | 第55页 |
| 2.3 实验仪器 | 第55-56页 |
| 3 实验方法 | 第56-57页 |
| 3.1 胞外多糖粗品的提取 | 第56页 |
| 3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第56页 |
| 3.3 胞外多糖的理化性质分析 | 第56页 |
| 3.4 胞外多糖的纯度及分子量分析 | 第56页 |
| 3.5 胞外多糖的单糖组成分析 | 第56页 |
| 3.6 胞外多糖的红外光谱分析 | 第56页 |
| 3.7 胞外多糖的甲基化分析 | 第56页 |
| 3.8 胞外多糖的核磁共振波谱分析 | 第56-57页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第57-69页 |
| 4.1 胞外多糖的提取 | 第57页 |
| 4.2 胞外多糖的分离纯化 | 第57-58页 |
| 4.2.1 离子交换柱层析 | 第57页 |
| 4.2.2 凝胶渗透柱层析 | 第57-58页 |
| 4.3 胞外多糖的化学组成分析 | 第58-59页 |
| 4.4 胞外多糖的纯度及分子量分析 | 第59-61页 |
| 4.5 胞外多糖的单糖组成分析 | 第61-62页 |
| 4.5.1 粗品胞外多糖的单糖组成分析 | 第61页 |
| 4.5.2 纯品多糖的单糖组成分析 | 第61-62页 |
| 4.6 胞外多糖的甲基化分析 | 第62-66页 |
| 4.7 胞外多糖的核磁共振波谱分析 | 第66-69页 |
| 5 本章总结 | 第69-70页 |
| 第三章 红树林根泥来源真菌 Aspergillus sp.产胞外多糖的分离纯化及结构研究 | 第70-86页 |
| 1 引言 | 第70页 |
| 2 实验材料 | 第70页 |
| 2.1 实验原料 | 第70页 |
| 2.2 实验试剂 | 第70页 |
| 2.3 实验仪器 | 第70页 |
| 3 实验方法 | 第70-72页 |
| 3.1 胞外多糖的提取 | 第70-71页 |
| 3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第71页 |
| 3.2.1 离子交换柱层析 | 第71页 |
| 3.2.2 凝胶渗透柱层析 | 第71页 |
| 3.3 胞外多糖的单糖组成分析 | 第71页 |
| 3.4 胞外多糖的纯度及分子量分析 | 第71页 |
| 3.5 胞外多糖的甲基化分析 | 第71-72页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第72-84页 |
| 4.1 胞外多糖的提取 | 第72页 |
| 4.2 胞外多糖粗品的单糖组成定性分析 | 第72页 |
| 4.3 胞外多糖的分离纯化 | 第72-74页 |
| 4.3.1 离子交换柱层析 | 第72-73页 |
| 4.3.2 凝胶渗透柱层析 | 第73-74页 |
| 4.4 胞外多糖的单糖组成分析 | 第74-75页 |
| 4.5 胞外多糖的纯度及分子量分析 | 第75-77页 |
| 4.6 胞外多糖的甲基化分析 | 第77-84页 |
| 5 本章小结 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-92页 |
| 结语 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 发表文章 | 第95-96页 |
| 个人简历 | 第96-97页 |
