| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 目录 | 第9-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-26页 |
| 1 痛风和高尿酸血症的概述 | 第14-19页 |
| 1.1 高尿酸血症的发病机理 | 第14-16页 |
| 1.2 高尿酸血症的危害 | 第16-18页 |
| 1.3 高尿酸血症的治疗 | 第18-19页 |
| 2 黄嘌呤氧化酶（Xanthine Oxidase，XO） | 第19-23页 |
| 2.1 XO 的作用机理和动力学性质 | 第19-20页 |
| 2.2 黄嘌呤氧化酶抑制剂 | 第20-23页 |
| 2.2.1 化学合成抑制剂 | 第20-22页 |
| 2.2.2 生物来源的黄嘌呤氧化酶抑制剂 | 第22-23页 |
| 3 实验藻类简介 | 第23-24页 |
| 3.1 孔石莼（Uiva Pertusa） | 第23-24页 |
| 3.2 真江蓠（Gracilaria verrucosa） | 第24页 |
| 4 立项依据 | 第24-26页 |
| 第二章 孔石莼提取物对黄嘌呤氧化酶抑制作用的研究 | 第26-48页 |
| 1 前言 | 第26页 |
| 2 实验材料及药品仪器 | 第26-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.2 实验试剂与溶剂配制 | 第26-29页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第26-28页 |
| 2.2.2 试剂配制 | 第28-29页 |
| 2.3 实验仪器 | 第29页 |
| 3 实验方法和步骤 | 第29-36页 |
| 3.1 孔石莼提取物的制备 | 第29-30页 |
| 3.2 孔石莼提取物对 XO 活性的影响 | 第30页 |
| 3.3 孔石莼水相组分提取工艺优化 | 第30-31页 |
| 3.3.1 浸提温度对孔石莼水相组分抑制率和得率的作用 | 第30-31页 |
| 3.3.2 乙醇浸提浓度对孔石莼组分抑制率和得率的作用 | 第31页 |
| 3.3.3 浸提时间对孔石莼组分抑制率和得率的作用 | 第31页 |
| 3.3.4 料液比对孔石莼水相组分抑制率和得率的作用 | 第31页 |
| 3.4 正交实验优化设计 | 第31-32页 |
| 3.5 验证实验 | 第32页 |
| 3.6 孔石莼提取物对 XO 抑制作用的研究 | 第32-33页 |
| 3.6.1 孔石莼水相组分和乙酸乙酯组分对 XO 半抑制浓度的测定 | 第32页 |
| 3.6.2 孔石莼水相组分溶液浓度对 XO 抑制率的影响 | 第32页 |
| 3.6.3 孔石莼水相组分对 XO 抑制机理 | 第32页 |
| 3.6.4 孔石莼水相组分对 XO 抑制类型和抑制常数的测定 | 第32-33页 |
| 3.7 孔石莼水相组分和别嘌呤醇的联合抑制作用 | 第33页 |
| 3.8 孔石莼水相组分的抗氧化性作用 | 第33-34页 |
| 3.8.1 孔石莼水相组分对·OH 的氧化性的影响 | 第33-34页 |
| 3.8.2 孔石莼水相组分对 O_2~-·的氧化性的影响 | 第34页 |
| 3.9 数据处理 | 第34页 |
| 3.10 孔石莼水相组分化学成分鉴定 | 第34-36页 |
| 3.10.1 多肽及蛋白质的鉴定 | 第35页 |
| 3.10.2 糖和苷的鉴定 | 第35页 |
| 3.10.3. 酚类和鞣质成分的鉴定 | 第35页 |
| 3.10.4 生物碱的鉴定 | 第35页 |
| 3.10.5 甾体的检验 | 第35页 |
| 3.10.6 黄酮的鉴定 | 第35页 |
| 3.10.7 有机酸的鉴定 | 第35-36页 |
| 4 实验结果 | 第36-46页 |
| 4.1 孔石莼水相组分提取工艺优化 | 第36-39页 |
| 4.1.1 浸提温度对孔石莼水相组分得率和抑制率的作用 | 第36-37页 |
| 4.1.2 乙醇浸提浓度对孔石莼组分抑制率和得率的作用 | 第37-38页 |
| 4.1.3 浸提时间对孔石莼组分抑制率和得率的作用 | 第38-39页 |
| 4.1.4 料液比对孔石莼水相组分提取物得率和抑制率的作用 | 第39页 |
| 4.2 正交试验结果 | 第39-40页 |
| 4.3 验证实验 | 第40-41页 |
| 4.4 孔石莼提取物对 XO 抑制作用的研究 | 第41-44页 |
| 4.4.1 孔石莼水相组分和乙酸乙酯组分对 XO 半抑制浓度的测定 | 第41页 |
| 4.4.2 孔石莼水相组分抑制率大小与浓度的关系 | 第41-42页 |
| 4.4.3 孔石莼水相组分对 XO 的抑制作用机理 | 第42-43页 |
| 4.4.4 孔石莼水相组分对 XO 的抑制作用类型和抑制常数 | 第43-44页 |
| 4.5 孔石莼水相组分和别嘌呤醇对 XO 的联合抑制作用 | 第44页 |
| 4.6 孔石莼水相组分对·OH 和 O_2~- ·的清除作用 | 第44-45页 |
| 4.6.1 孔石莼水相组分对 O_2·的清除作用 | 第44页 |
| 4.6.2 孔石莼水相组分对·OH 的清除作用 | 第44-45页 |
| 4.7 孔石莼水相组分化学成分鉴定结果 | 第45-46页 |
| 5 讨论 | 第46-48页 |
| 第三章 真江蓠提取物对黄嘌呤氧化酶抑制剂作用的研究 | 第48-60页 |
| 1 前言 | 第48页 |
| 2 实验材料及药品仪器 | 第48页 |
| 3 实验方法 | 第48-49页 |
| 3.1 真江蓠提取物的制备 | 第48页 |
| 3.2 真江蓠提取物对 XO 活性的影响 | 第48页 |
| 3.3 真江蓠提取物提取工艺优化 | 第48页 |
| 3.4 正交实验优化设计 | 第48-49页 |
| 3.5 验证实验 | 第49页 |
| 3.6 真江蓠提取物对 XO 抑制作用的研究 | 第49页 |
| 3.7 真江蓠水相组分和别嘌呤醇的联合抑制作用 | 第49页 |
| 3.8 真江蓠水相组分的抗氧化性作用 | 第49页 |
| 3.9 数据处理 | 第49页 |
| 3.10 真江蓠水相组分化学成分鉴定 | 第49页 |
| 4 实验结果 | 第49-59页 |
| 4.1 真江蓠浸提条件的优化 | 第49-54页 |
| 4.1.1 乙醇浸提浓度对真江蓠水相组分得率和抑制率的作用 | 第49-50页 |
| 4.1.2 浸提时间对真江蓠水相组分得率和抑制率的作用 | 第50-52页 |
| 4.1.3 料液比对真江蓠水相组分得率和抑制率的作用 | 第52-53页 |
| 4.1.4 浸提温度对真江蓠水相组分得率和抑制率的作用 | 第53-54页 |
| 4.2 正交试验结果 | 第54页 |
| 4.3 验证实验 | 第54-55页 |
| 4.4 真江蓠水相组分对 XO 抑制作用研究 | 第55-57页 |
| 4.4.1 真江蓠水相组分和乙酸乙酯两种组分对 XO 半抑制浓度的测定 | 第55页 |
| 4.4.2 真江蓠水相组分对 XO 抑制作用机理研究 | 第55-56页 |
| 4.4.3 真江蓠水相组分对 XO 抑制类型和抑制常数测定 | 第56-57页 |
| 4.5 真江蓠水相组分和别嘌呤对 XO 的联合抑制作用 | 第57页 |
| 4.6 真江蓠水相组分对·OH 和 O_2~·的清除作用 | 第57-58页 |
| 4.6.1 真江蓠水相组分对 O_2~·的清除作用 | 第57页 |
| 4.6.2 真江蓠水相组分对·OH 的清除作用 | 第57-58页 |
| 4.7 真江蓠水相组分化学成分鉴定 | 第58-59页 |
| 5 讨论 | 第59-60页 |
| 第四章 真江蓠水相组分对小鼠高尿酸模型血尿酸水平的影响 | 第60-65页 |
| 1 前言 | 第60页 |
| 2 实验材料和实验设备 | 第60-61页 |
| 2.1 实验材料 | 第60页 |
| 2.2 实验试剂及配制 | 第60页 |
| 2.3 实验仪器 | 第60-61页 |
| 3 实验方法 | 第61页 |
| 4 数据处理 | 第61页 |
| 5 实验结果 | 第61-63页 |
| 5.1 水相提取物对高尿酸血症小鼠血尿酸影响 | 第61-62页 |
| 5.2 实验各组对小鼠实验前后体重的影响 | 第62-63页 |
| 6 讨论 | 第63-65页 |
| 全文总结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
