摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-10页 |
第1章 绪论 | 第10-20页 |
·手性化合物概述 | 第10-11页 |
·不对称合成手性化合物 | 第11-13页 |
·生物法不对称还原 | 第11-12页 |
·化学法不对称氢化 | 第12-13页 |
·外消旋体拆分法制备手性化合物 | 第13页 |
·非生物拆分法 | 第13页 |
·生物催化拆分法 | 第13页 |
·生物拆分法制备光学纯手性化合物的特点与意义 | 第13-14页 |
·生物法制备光学纯苯乙二醇的研究现状 | 第14-18页 |
·本课题的研究意义及思路 | 第18-20页 |
第2章 苯乙二醇二乙酸酯水解酶生产菌株的筛选 | 第20-33页 |
·前言 | 第20页 |
·材料与方法 | 第20-27页 |
·主要试剂及仪器 | 第20-22页 |
·筛选培养基 | 第22页 |
·微生物筛选方法 | 第22-23页 |
·底物及中间产物的化学合成 | 第23-24页 |
·化学合成苯乙二醇二羧酸酯 | 第23-24页 |
·化学合成外消旋苯乙二醇-1-乙酸酯和苯乙二醇-2-乙酸酯 | 第24页 |
·分析方法的建立 | 第24-26页 |
·薄板层析分析法 | 第24-25页 |
·液相色谱分析法 | 第25页 |
·气相色谱分析法 | 第25-26页 |
·定量分析标准曲线的制作 | 第26页 |
·相关底物和中间产物的核磁共振数据 | 第26页 |
·酶活力的测定方法 | 第26-27页 |
·结果与讨论 | 第27-32页 |
·标准曲线的绘制 | 第27-30页 |
·底物及各种产物的气相色谱分析标准曲线 | 第27-29页 |
·对硝基苯酚溶解于pH 7.0 KPB缓冲液中的标准曲线 | 第29-30页 |
·筛菌结果 | 第30页 |
·重组枯草芽孢杆菌酯酶在大肠杆菌中表达条件的优化 | 第30-32页 |
·最适诱导温度的优化 | 第30-31页 |
·最佳IPTG浓度的优化 | 第31-32页 |
·本章小结 | 第32-33页 |
第3章 苯乙二醇二羧酸酯酶促水解反应条件的优化及(S)-PED的克级制备 | 第33-45页 |
·前言 | 第33页 |
·材料与方法 | 第33-35页 |
·主要试剂 | 第33-34页 |
·菌株 | 第34页 |
·微生物培养基 | 第34页 |
·重组大肠杆菌的培养条件 | 第34页 |
·对映选择性酶促水解反应 | 第34-35页 |
·酶促反应产物的分离纯化 | 第35页 |
·产物的重结晶 | 第35页 |
·结果和讨论 | 第35-44页 |
·酶促水解苯乙二醇二乙酸酯的反应进程 | 第35-37页 |
·酶促水解苯乙二醇二乙酸酯反应条件的优化 | 第37-43页 |
·pH值对酶促反应的影响 | 第37-38页 |
·温度对酶促反应的影响 | 第38-39页 |
·助溶剂对酶促反应的影响 | 第39页 |
·细胞浓度对酶促反应的影响 | 第39-41页 |
·底物浓度对酶促反应的影响 | 第41-42页 |
·底物酰基链长对酶促反应的影响 | 第42-43页 |
·产物(S)-PED的克级制备 | 第43-44页 |
·本章小结 | 第44-45页 |
结论与展望 | 第45-47页 |
参考文献 | 第47-52页 |
附录 | 第52-58页 |
攻读硕士期间论文撰写情况 | 第58-59页 |
致谢 | 第59页 |