| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 1 绪论 | 第11-15页 |
| 1.1 课题提出 | 第11-12页 |
| 1.2 研究内容 | 第12-13页 |
| 1.3 技术路线 | 第13-15页 |
| 2 细胞联合培养流动腔的设计和建立 | 第15-21页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-17页 |
| 2.2.1 流动腔的设计 | 第15-16页 |
| 2.2.2 流动腔尺寸的筛选 | 第16页 |
| 2.2.3 流场的数值分析 | 第16-17页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第17-20页 |
| 2.4 小结 | 第20-21页 |
| 3 模拟血管微环境的药物筛选模型的建立 | 第21-29页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第21-22页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第21页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第21-22页 |
| 3.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 3.2.1 主要溶液的配制 | 第22页 |
| 3.2.2 细胞的体外培养 | 第22-23页 |
| 3.2.3 ECs 和 SMCs 的联合培养 | 第23页 |
| 3.2.4 体外流动系统的建立 | 第23-24页 |
| 3.2.5 考察不同大小的剪切力和作用时间对 ECs 的影响 | 第24页 |
| 3.2.6 考察不同大小的剪切力和作用时间对 SMCs 的影响 | 第24-25页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第25-28页 |
| 3.3.1 抗心血管疾病体外药物筛选模型的构建 | 第25-26页 |
| 3.3.2 剪切力大小和作用时间的筛选 | 第26-28页 |
| 3.4 小结 | 第28-29页 |
| 4 抗心血管疾病体外药物筛选模型的验证 | 第29-51页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第29-30页 |
| 4.1.1 材料 | 第29-30页 |
| 4.1.2 仪器 | 第30页 |
| 4.2 实验方法 | 第30-37页 |
| 4.2.1 主要溶液的配制 | 第30-31页 |
| 4.2.2 考察不同浓度曲匹地尔对 ECs 或 SMCs 活性的影响 | 第31页 |
| 4.2.3 考察不同浓度丹参提取物对 ECs 或 SMCs 活性的影响 | 第31-32页 |
| 4.2.4 ECs 形态学实验 | 第32-33页 |
| 4.2.5 ECs 凋亡实验 | 第33页 |
| 4.2.6 SMCs 迁移实验 | 第33-34页 |
| 4.2.7 总蛋白浓度的测定 | 第34-35页 |
| 4.2.8 细胞培养液中 PDGF 的检测 | 第35页 |
| 4.2.9 细胞培养液中 SOD 的检测 | 第35-36页 |
| 4.2.10 细胞培养液中 MDA 的检测 | 第36-37页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第37-50页 |
| 4.3.1 曲匹地尔作用浓度的筛选 | 第37-39页 |
| 4.3.2 丹参提取物作用浓度的筛选 | 第39-41页 |
| 4.3.3 模型中 ECs 的形态学研究结果 | 第41-43页 |
| 4.3.4 药物在模型中对 ECs 凋亡的保护作用 | 第43-45页 |
| 4.3.5 药物在模型中对 SMCs 迁移的抑制作用 | 第45-46页 |
| 4.3.6 药物在模型中对细胞产生 PDGF 的抑制作用 | 第46-49页 |
| 4.3.7 药物在模型中对细胞产生 SOD 和 MDA 的作用 | 第49-50页 |
| 4.4 小结 | 第50-51页 |
| 5 药物筛选模型中靶细胞活性成分筛选 | 第51-59页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第51-52页 |
| 5.1.1 材料 | 第51页 |
| 5.2.2 仪器 | 第51-52页 |
| 5.2 实验方法 | 第52-54页 |
| 5.2.1 主要溶液的配制 | 第52页 |
| 5.2.2 H_2O_2浓度的筛选 | 第52-53页 |
| 5.2.3 体外模拟血管微环境药物筛选模型对丹参提取物活性成分的筛选 | 第53-54页 |
| 5.3 结果和讨论 | 第54-58页 |
| 5.3.1 H_2O_2作用浓度和时间的筛选 | 第54-55页 |
| 5.3.2 丹参活性成分在不同药物筛选模型中的筛选 | 第55-58页 |
| 5.4 小结 | 第58-59页 |
| 6 主要结论 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 附录 | 第67页 |
| A. 作者在攻读硕士学位期间发表的论文题目 | 第67页 |
