中文摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
英文缩略词表 | 第11-13页 |
前言 | 第13-17页 |
实验研究 | 第17-65页 |
1 实验材料 | 第17-21页 |
1.1 实验动物 | 第17页 |
1.2 受试药物 | 第17-18页 |
1.2.1 药物的质量检测 | 第17-18页 |
1.2.2 药物的配制 | 第18页 |
1.3 仪器与试剂 | 第18-20页 |
1.3.1 主要仪器 | 第18-19页 |
1.3.2 主要试剂 | 第19-20页 |
1.3.3 相关溶液配制 | 第20页 |
1.4 实验场地 | 第20页 |
1.5 统计学处理方法 | 第20-21页 |
2 实验方法及结果 | 第21-65页 |
2.1 五味开窍药对pMCAO大鼠的神经血管单元保护作用 | 第21-35页 |
2.1.1 动物分组、给药及造模方法 | 第21页 |
2.1.2 造模成功的标准 | 第21-22页 |
2.1.3 麻醉后苏醒时间的记录 | 第22-23页 |
2.1.4 神经功能学评分 | 第23-24页 |
2.1.5 脑组织含水量测定 | 第24-28页 |
2.1.6 脑组织形态观察及脑梗死率的测定 | 第28-31页 |
2.1.7 HE染色检测脑组织病理形态改变 | 第31-35页 |
2.2 五味开窍药对pMCAO大鼠的神经血管单元保护作用机制研究 | 第35-65页 |
2.2.1 透射电镜观察大鼠脑组织超微结构病理变化 | 第35-40页 |
2.2.2 ELISA法检测pMCAO大鼠血清中VEGF、NGF、IL-1β、TNF-α含量 | 第40-43页 |
2.2.3 RT-PCR法检测pMCAO大鼠缺血半暗带脑组织中Wnt/β-catenin通路相关mRNA的表达 | 第43-52页 |
2.2.4 Werstern-blot法检测pMCAO大鼠缺血半暗带脑组织Wnt3a、GSK-3β、β-catenin蛋白的表达 | 第52-57页 |
2.2.5 免疫组织化学法检测pMCAO大鼠缺血半暗带脑组织中APC、Bax、Bcl-2、Caspase-3、Claudin5蛋白的表达 | 第57-65页 |
讨论 | 第65-95页 |
1 选题意义 | 第65-67页 |
1.1 理论意义 | 第65-66页 |
1.2 临床意义 | 第66-67页 |
2 本研究相关选择依据 | 第67-71页 |
2.1 代表开窍药选择的依据 | 第67-68页 |
2.2 NVU与Wnt/β-catenin信号通路选择依据 | 第68-69页 |
2.3 给药剂量选择依据 | 第69-70页 |
2.4 溶剂的选择依据 | 第70页 |
2.5 pMCAO模型选择依据 | 第70-71页 |
2.6 大鼠性别选择依据 | 第71页 |
3 芳香开窍药脑保护及NVU保护机制的讨论 | 第71-83页 |
3.1 芳香开窍药对pMCAO大鼠的相关药效的影响 | 第72-77页 |
3.1.1 对麻醉后苏醒时间的影响 | 第72页 |
3.1.2 对神经功能评分的影响 | 第72-73页 |
3.1.3 对脑组织含水量的影响 | 第73-74页 |
3.1.4 对脑梗死面积的影响 | 第74页 |
3.1.5 对脑组织形态的影响 | 第74-76页 |
3.1.6 综合分析 | 第76-77页 |
3.2 芳香开窍药对pMCAO大鼠NVU保护的影响机制 | 第77-83页 |
3.2.1 调控Wnt/β-catenin信号通路 | 第77-80页 |
3.2.2 神经元生长及修复机制 | 第80-81页 |
3.2.3 对血管及BBB的影响机制 | 第81-83页 |
4 综合分析结果讨论 | 第83-95页 |
4.1 对pMCAO模型大鼠脑保护作用强弱的比较 | 第84-87页 |
4.2 五味开窍药对pMCAO模型大鼠NVU保护作用机制的分析 | 第87-91页 |
4.2.1 与Wnt/β-catenin调控相关结果分析 | 第87-88页 |
4.2.2 与细胞凋亡相关结果分析 | 第88-90页 |
4.2.3 与血管及BBB机制的相关分析 | 第90-91页 |
4.3 综合分析 | 第91-95页 |
结论 | 第95-96页 |
创新与特色 | 第96-97页 |
问题与展望 | 第97-98页 |
综述一 | 第98-105页 |
综述二 | 第105-111页 |
致谢 | 第111-112页 |
参考文献 | 第112-125页 |
在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第125-126页 |