中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第10-13页 |
前言 | 第13-17页 |
研究现状、成果 | 第13-16页 |
研究目的、方法 | 第16-17页 |
一、ASCs、HUCBMSCs的分离培养及HUCBMSCs体外诱导分化 | 第17-40页 |
1.1 ASCs的分离、纯化、培养与鉴定 | 第17-21页 |
1.1.1 对象和方法 | 第17-20页 |
1.1.2 结果 | 第20-21页 |
1.2 人脐血间充质干细胞的体外诱导培养及鉴定 | 第21-33页 |
1.2.1 对象和方法 | 第21-30页 |
1.2.2 结果 | 第30-33页 |
1.3 讨论 | 第33-38页 |
1.3.1 雪旺细胞的作用 | 第34-35页 |
1.3.2 间充质干细胞的来源 | 第35页 |
1.3.3 间充质干细胞表面抗原鉴定 | 第35-36页 |
1.3.4 间充质干细胞神经方向诱导分化 | 第36-38页 |
1.4 小结 | 第38-40页 |
二、ASCs和HUCBMSCs体内共移植后HUCBMSCs神经方向分化 | 第40-46页 |
2.1 对象和方法 | 第40-41页 |
2.1.1 实验材料和器械 | 第40页 |
2.1.2 实验分组 | 第40页 |
2.1.3 脊髓损伤动物模型制作及细胞移植 | 第40-41页 |
2.1.4 脊髓标本取材 | 第41页 |
2.1.5 Western-Bolt蛋白半定量检测 | 第41页 |
2.1.6. 荧光实时定量PCR(Real-time RT-PCR)检测 | 第41页 |
2.2 结果 | 第41-43页 |
2.2.1 动物饲养及观察 | 第41-42页 |
2.2.2 Western-Bolt半定量检测 | 第42页 |
2.2.3 Real-time PCR检测 | 第42-43页 |
2.3 讨论 | 第43-45页 |
2.3.1 脊髓损伤后微环境变化 | 第43页 |
2.3.2 机体内微环境变化与间充质干细胞的相互影响 | 第43-45页 |
2.4 小结 | 第45-46页 |
三、ASCs联合HUCBMSCs移植修复脊髓损伤 | 第46-55页 |
3.1 对象和方法 | 第46-48页 |
3.1.1 实验材料和器械 | 第46页 |
3.1.2 实验分组同2.1.2(本实验每组20只) | 第46页 |
3.1.3 脊髓损伤动物模型制作及细胞移植同2.1.3 | 第46页 |
3.1.4 运动功能评分 | 第46页 |
3.1.5 BDA顺行示踪 | 第46-47页 |
3.1.6 脊髓冰冻切片的制备 | 第47页 |
3.1.7 BDA染色显影、HE及免疫组化染色 | 第47-48页 |
3.1.8 切片观察及图像采集 | 第48页 |
3.1.9 数据及图像统计分析 | 第48页 |
3.2 实验结果 | 第48-50页 |
3.2.1 运动功能评分 | 第48-49页 |
3.2.2 BDA顺行示踪 | 第49页 |
3.2.3 组织切片染色 | 第49-50页 |
3.3. 讨论 | 第50-54页 |
3.3.1 雪旺细胞移植在治疗脊髓损伤中的作用 | 第50-51页 |
3.3.2 间充质干细胞移植在治疗脊髓损伤中的作用 | 第51-52页 |
3.3.3 细胞联合移植治疗脊髓损伤 | 第52-54页 |
3.4. 小结 | 第54-55页 |
全文结论 | 第55-57页 |
论文创新点 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-71页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第71-72页 |
附录 | 第72-79页 |
综述 | 第79-91页 |
综述参考文献 | 第85-91页 |
致谢 | 第91页 |