| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第7-11页 |
| 第一章 综述部分 | 第11-31页 |
| 一. miRNA的研究进展 | 第12-22页 |
| 1.1 microRNA概念及特征 | 第12-13页 |
| 1.2 microRNA成熟过程 | 第13-14页 |
| 1.3 microRNA作用机制及功能意义 | 第14-17页 |
| 1.4 血清/血浆miRNA的研究进展 | 第17-22页 |
| 1.4.1 血清/血浆中存在microRNA | 第17-18页 |
| 1.4.2 血清/血浆microRNA的特征 | 第18-19页 |
| 1.4.3 血清/血浆microRNA的来源及产生方式 | 第19-20页 |
| 1.4.4 血清/血浆microRNA与肿瘤 | 第20-21页 |
| 1.4.5 血清/血浆microRNA作为诊断标志物的意义及展望 | 第21-22页 |
| 二. microRNA与宫颈癌 | 第22-24页 |
| 2.1 miRNA在宫颈癌中的研究 | 第22-23页 |
| 2.2 miRNA与宫颈癌人乳头状瘤病毒感染 | 第23-24页 |
| 2.3 miRNA与宫颈癌的诊断和治疗 | 第24页 |
| 三. microRNA与子宫内膜癌 | 第24-26页 |
| 3.1 miRNA在子宫内膜癌中的研究 | 第24-25页 |
| 3.2 miRNA在子宫内膜癌研究中的展望 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-31页 |
| 第二章 实验部分 | 第31-79页 |
| PartⅠ 宫颈癌血清miRNAs的研究 | 第32-58页 |
| 一. 引言 | 第33-34页 |
| 二. 材料和方法 | 第34-45页 |
| 2.1 实验设计,病人和对照 | 第34-39页 |
| 2.2 仪器和试剂 | 第39-40页 |
| 2.3 血清的采集和RNA提取 | 第40-44页 |
| 2.3.1 血清RNA提取(用于Solexa测序) | 第40-41页 |
| 2.3.2 Solexa测序 | 第41-42页 |
| 2.3.3 血清miRNA的提取(用于RT-qPCR实验) | 第42页 |
| 2.3.4 RT-qPCR分析定量miRNAs | 第42-44页 |
| 2.4 SCC和CA 125的测定 | 第44页 |
| 2.5 统计分析 | 第44-45页 |
| 三. 实验结果 | 第45-52页 |
| 3.1 Solexa测序结果 | 第45-47页 |
| 3.1.1 两组混合血清中小分子RNA | 第45-46页 |
| 3.1.2 两组混合血清miRNA表达量 | 第46-47页 |
| 3.2 RT-qPCR检测宫颈癌患者血清miRNAs的表达水平 | 第47-49页 |
| 3.3 ROC曲线分析 | 第49-50页 |
| 3.4 危险分数分析 | 第50-51页 |
| 3.5 宫颈癌不同分期和分化类型的miRNA表达差异 | 第51-52页 |
| 四. 讨论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| PartⅡ 子宫内膜癌血清miRNAs的研究 | 第58-79页 |
| 一. 引言 | 第59-60页 |
| 二. 材料和方法 | 第60-69页 |
| 2.1 实验设计,病人和对照 | 第60-63页 |
| 2.2 仪器和试剂 | 第63-64页 |
| 2.3 血清的采集和RNA提取 | 第64-69页 |
| 2.3.1 血清RNA提取(用于TaqMan低密度芯片) | 第64-65页 |
| 2.3.2 TaqMan低密度芯片 | 第65-67页 |
| 2.3.3 血清miRNA的提取(用于RT-qPCR实验) | 第67页 |
| 2.3.4 RT-qPCR分析定量miRNAs | 第67-69页 |
| 2.4 CA 125的测定 | 第69页 |
| 2.5 统计分析 | 第69页 |
| 三. 实验结果 | 第69-74页 |
| 3.1 TaqMan低密度芯片结果 | 第69-72页 |
| 3.2 RT-qPCR检测子宫内膜癌患者血清miRNAs的表达水平 | 第72-73页 |
| 3.3 ROC曲线和危险分数分析 | 第73-74页 |
| 四. 讨论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 研究生发表论文 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
