| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 符号说明 | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第9-11页 |
| 2 实验材料与方法 | 第11-16页 |
| 2.1 研究对象 | 第11页 |
| 2.2 实验主要材料与试剂 | 第11-12页 |
| 2.3 实验主要仪器 | 第12-13页 |
| 2.4 主要实验溶液的配置和保存 | 第13页 |
| 2.4.1 冻存液的配置及PBMCs的冻存 | 第13页 |
| 2.4.2 冻存的PBMCs的复苏步骤 | 第13页 |
| 2.4.3 培养基配置 | 第13页 |
| 2.5 实验方法 | 第13-14页 |
| 2.5.1 血样 | 第13页 |
| 2.5.2 PBMCs提取 | 第13-14页 |
| 2.5.3 细胞培养 | 第14页 |
| 2.6 流式染色实验步骤如下 | 第14-15页 |
| 2.7 统计学分析 | 第15-16页 |
| 3 结果 | 第16-21页 |
| 3.1 参与者一般情况比较 | 第16页 |
| 3.2 健康人和乳腺癌病人外周血中调节性T细胞的检测 | 第16-17页 |
| 3.3 健康对照组与乳腺癌患者外周血中CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞占总CD4~+T细胞的比例 | 第17-18页 |
| 3.4 芬太尼和舒芬太尼各处理组CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg/CD4~+T细胞均值变化趋势 | 第18-19页 |
| 3.5 用PBS、芬太尼、舒芬太尼干预,流式检测CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg的数量 | 第19页 |
| 3.6 各干预组中正常人组和乳腺癌组CD4~+CD25~+oxp3~+Treg/CD4~+T细胞均值趋势一致 | 第19-21页 |
| 4 讨论 | 第21-24页 |
| 5 结论 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-29页 |
| 综述 | 第29-48页 |
| 参考文献 | 第40-48页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
