| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第19-28页 |
| 1.1 花生蛋白的应用价值 | 第19页 |
| 1.2 植物源蛋白质改性制备活性短肽 | 第19-20页 |
| 1.2.1 高压微射流改性对蛋白质功能性质的影响 | 第19-20页 |
| 1.2.2 高压微射流改性对蛋白质结构的影响 | 第20页 |
| 1.3 花生短肽的生理活性 | 第20-22页 |
| 1.3.1 花生短肽的ACE抑制活性 | 第21页 |
| 1.3.2 花生短肽的抗氧化活性 | 第21-22页 |
| 1.4 短肽消化及吸收转运 | 第22-24页 |
| 1.4.1 短肽转运形式 | 第22页 |
| 1.4.2 已报道可通过小肠完整转运短肽 | 第22-23页 |
| 1.4.3 短肽完整转运路径 | 第23页 |
| 1.4.4 通过小肠完整转运短肽局限性 | 第23-24页 |
| 1.5 短肽运载体系 | 第24-26页 |
| 1.5.1 脂质体 | 第24-25页 |
| 1.5.2 纳米脂质体运载体系 | 第25页 |
| 1.5.3 肽运载体系 | 第25页 |
| 1.5.4 亲水性功能组分的脂质体包封 | 第25-26页 |
| 1.5.5 肽对运载体系的修饰作用 | 第26页 |
| 1.6 立题背景及意义 | 第26页 |
| 1.7 主要研究内容 | 第26-28页 |
| 第二章 高压微射流解聚花生分离蛋白机制研究 | 第28-44页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-32页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第29页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第29页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第29-30页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第30-32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-43页 |
| 2.3.1 花生分离蛋白主要成分 | 第32-33页 |
| 2.3.2 高压微射流处理对花生分离蛋白性质影响 | 第33-37页 |
| 2.3.3 花生分离蛋白解聚与聚集过程的氢键变化 | 第37-39页 |
| 2.3.4 花生分离蛋白解聚与聚集过程的疏水相互作用 | 第39-40页 |
| 2.3.5 花生分离蛋白解聚与聚集过程的巯基-二硫键作用 | 第40-41页 |
| 2.3.6 花生分离蛋白解聚与聚集过程的静电相互作用 | 第41-42页 |
| 2.3.7 HPM处理诱导花生分离蛋白解聚与聚集的机制 | 第42-43页 |
| 2.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 花生短肽制备及性质分析 | 第44-55页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 材料与方法 | 第44-48页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第44页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第45页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第45-48页 |
| 3.3 结果与分析 | 第48-54页 |
| 3.3.1 高压微射流改性PPI工艺参数分析 | 第48-49页 |
| 3.3.2 HPM改性PPI酶解产物 | 第49-51页 |
| 3.3.3 HPM改性PPI酶解产物生理活性变化 | 第51-52页 |
| 3.3.4 花生短肽理化性质分析 | 第52-54页 |
| 3.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 花生短肽纳米脂质体制备 | 第55-72页 |
| 4.1 引言 | 第55页 |
| 4.2 材料与方法 | 第55-59页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第55页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第55-56页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第56页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第56-59页 |
| 4.3 结果与分析 | 第59-70页 |
| 4.3.1 脂质体破乳剂筛选 | 第59-60页 |
| 4.3.2 肽含量标准曲线制定 | 第60-61页 |
| 4.3.3 脂质体包封率测定方法 | 第61页 |
| 4.3.4 脂质体壁材选择单因素试验 | 第61-64页 |
| 4.3.5 脂质体壁材组成优化 | 第64-67页 |
| 4.3.6 纳米脂质体制备工艺 | 第67-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章 花生短肽纳米脂质体Ostwald熟化与性质分析 | 第72-82页 |
| 5.1 引言 | 第72页 |
| 5.2 材料与方法 | 第72-74页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第72页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第72-73页 |
| 5.2.3 实验仪器 | 第73页 |
| 5.2.4 实验方法 | 第73-74页 |
| 5.3 结果与分析 | 第74-80页 |
| 5.3.1 纳米脂质体Ostwald熟化分析 | 第74-76页 |
| 5.3.2 纳米脂质体Ostwald熟化对包封率的影响 | 第76-77页 |
| 5.3.3 脂质体理化性质 | 第77-79页 |
| 5.3.4 脂质体稳定性 | 第79-80页 |
| 5.4 本章小结 | 第80-82页 |
| 第六章 花生短肽纳米脂质体的体外消化与吸收转运机制研究 | 第82-97页 |
| 6.1 引言 | 第82页 |
| 6.2 材料与方法 | 第82-86页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第82-83页 |
| 6.2.2 实验试剂 | 第83页 |
| 6.2.3 实验仪器 | 第83-84页 |
| 6.2.4 实验方法 | 第84-86页 |
| 6.3 结果与分析 | 第86-96页 |
| 6.3.1 花生短肽脂质体体外释放规律 | 第86-87页 |
| 6.3.2 载荷花生短肽的脂质体体外模拟消化特性 | 第87-89页 |
| 6.3.3 Caco-2 细胞吸收转运接受池短肽序列测定 | 第89-94页 |
| 6.3.4 花生短肽纳米脂质体小肠细胞吸收转运机制分析 | 第94-96页 |
| 6.4 本章小结 | 第96-97页 |
| 第七章 全文结论 | 第97-100页 |
| 7.1 结论 | 第97-98页 |
| 7.2 创新点 | 第98页 |
| 7.3 展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 作者简历 | 第111页 |
