| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-28页 |
| 1.1 研究背景 | 第12-23页 |
| 1.1.1 细胞凋亡 | 第13-14页 |
| 1.1.2 自噬 | 第14-16页 |
| 1.1.3 程序性细胞坏死 | 第16-18页 |
| 1.1.4 凋亡与自噬 | 第18-20页 |
| 1.1.5 凋亡与坏死 | 第20-22页 |
| 1.1.6 自噬与坏死 | 第22-23页 |
| 1.2 化合物 1,2,3-triazole-Jaspine B hybrids | 第23-28页 |
| 1.2.1 化合物 1,2,3-triazole-Jaspine B hybrids的研究进展 | 第23-25页 |
| 1.2.2 研究目的和意义 | 第25-28页 |
| 第二章 材料和方法 | 第28-44页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-33页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第28页 |
| 2.1.2 实验主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第29-30页 |
| 2.1.4 试剂的配置 | 第30-33页 |
| 2.2 胃癌细胞MGC803的培养 | 第33-35页 |
| 2.2.1 细胞培养的准备工作 | 第33-34页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第34-35页 |
| 2.3 MTT比色法和台盼蓝染色法确定LHM作用于MGC803的最适范围 | 第35-36页 |
| 2.3.1 MTT比色法检测 | 第35页 |
| 2.3.2 台盼蓝染色法检测 | 第35-36页 |
| 2.4 流式细胞术检测LHM对MGC803细胞凋亡的影响情况 | 第36页 |
| 2.5 流式细胞术检测LHM作用于MGC803细胞内活性氧变化 | 第36-37页 |
| 2.6 Hoechst33342-PI检测LHM对MGC803细胞形态变化 | 第37-38页 |
| 2.7 免疫印迹 | 第38-43页 |
| 2.7.1 BCA蛋白标准曲线的制备 | 第38页 |
| 2.7.2 免疫印迹 | 第38-43页 |
| 2.8 免疫沉淀检测 | 第43-44页 |
| 第三章 结果 | 第44-62页 |
| 3.1 MTT法测定LHM对不同肿瘤细胞的增殖抑制作用 | 第44页 |
| 3.2 LHM对MGC803作用最适浓度的选择 | 第44-47页 |
| 3.3 Western blot检测LHM诱导MGC803对凋亡相关蛋白表达的影响 | 第47-49页 |
| 3.4 LHM对MGC803中蛋白表达影响 | 第49-51页 |
| 3.5 活性氧参与LHM诱导MGC803的过程 | 第51-53页 |
| 3.6 检测自噬和坏死可能参与LHM诱导MGC803的过程 | 第53-55页 |
| 3.7 LHM诱导MGC803的动态过程 | 第55-56页 |
| 3.8 LHM诱导MGC803的动态过程中相关蛋白表达水平的变化 | 第56-58页 |
| 3.9 MAPK参与LHM诱导MGC803的动态过程 | 第58-61页 |
| 3.10 Bcl-2 家族蛋白参与LHM诱导MGC803的过程 | 第61-62页 |
| 第四章 讨论 | 第62-66页 |
| 4.1 LHM对肿瘤细胞的基础研究 | 第62页 |
| 4.2 LHM作用MGC803后对相关蛋白表达影响 | 第62-63页 |
| 4.3 活性氧参与LHM诱导MGC803的过程 | 第63-64页 |
| 4.4 MAPK参与LHM诱导MGC803的动态过程 | 第64-66页 |
| 第五章 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第78-79页 |
