| 英文缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 参考文献 | 第12-15页 |
| 1. 引言 | 第15-16页 |
| 2. 材料与方法 | 第16-26页 |
| 2.1 主要实验试剂与设备 | 第16-18页 |
| 2.2 细胞培养和细胞生长曲线绘制 | 第18-19页 |
| 2.3 小干扰RNA制备和瞬时转染 | 第19-20页 |
| 2.4 H_2O_2、CoPP、ZnPP实验浓度的确定 | 第20-21页 |
| 2.5 ELISA法测定各组hLEC细胞内HO-1水平 | 第21-22页 |
| 2.6 免疫荧光双染色观察各处理组hLEC | 第22-23页 |
| 2.7 细胞凋亡的观察 | 第23页 |
| 2.8 ROS、GSH和SOD的测定 | 第23-25页 |
| 2.9 蛋白质印迹法(Western blot)蛋白测定 | 第25-26页 |
| 2.10 统计学分析 | 第26页 |
| 3. 结果 | 第26-38页 |
| 3.1 hLEC细胞增殖与细胞生长特征 | 第26-28页 |
| 3.2 H_2O_2、CoPP和ZnPP实验浓度的确定 | 第28-30页 |
| 3.3 ho-1基因沉默加剧H_2O_2介导的细胞死亡 | 第30-33页 |
| 3.4 不同干预措施导致hLEC细胞免疫荧光双标记染色变化 | 第33页 |
| 3.5 在H_2O_2、CoPP和ZnPP干预下细胞HO-1表达水平的检测 | 第33-34页 |
| 3.6 HO-1抑制H_2O_2介导的细胞内ROS增高 | 第34-36页 |
| 3.7 HO-1增强抗氧化酶类SOD和GSH活性 | 第36页 |
| 3.8 HO-1降低H_2_O2介导的细胞凋亡 | 第36-38页 |
| 3.9 HO-1降低促凋亡蛋白表达 | 第38页 |
| 4. 讨论 | 第38-42页 |
| 5. 结论 | 第42页 |
| 6. 参考文献 | 第42-47页 |
| 文献综述 | 第47-55页 |
| 1. HO-1生物学特征 | 第47-48页 |
| 2. HO-1的调控 | 第48页 |
| 3. HO-1的抗凋亡作用 | 第48-49页 |
| 4. HO-1的抗氧化作用 | 第49-50页 |
| 5. 结语 | 第50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
