| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-49页 |
| 1.1 荧光分子探针的结构及识别原理 | 第13-19页 |
| 1.1.1 荧光分子探针的结构 | 第13-14页 |
| 1.1.2 荧光分子探针的识别原理 | 第14-19页 |
| 1.2 氟离子荧光探针的研究进展 | 第19-25页 |
| 1.2.1 反应型氟离子荧光探针 | 第19-22页 |
| 1.2.2 基于有机硼类化合物的氟离子荧光探针 | 第22-24页 |
| 1.2.3 基于氢键作用的氟离子荧光探针 | 第24-25页 |
| 1.3 硫化氢分子荧光探针的研究进展 | 第25-32页 |
| 1.3.1 基于还原反应的硫化氢荧光探针 | 第26-27页 |
| 1.3.2 基于亲核反应的硫化氢荧光探针 | 第27-31页 |
| 1.3.3 基于硫化铜沉淀的硫化氢荧光探针 | 第31-32页 |
| 1.4 淀粉样蛋白荧光探针的研究进展 | 第32-38页 |
| 1.4.1 淀粉样蛋白简介 | 第32-35页 |
| 1.4.2 淀粉样蛋白的荧光检测方法 | 第35-38页 |
| 1.5 本论文的选题思路及创新点 | 第38-39页 |
| 1.5.1 本论文的选题思路 | 第38-39页 |
| 1.5.2 本论文的创新点 | 第39页 |
| 参考文献 | 第39-49页 |
| 第二章 基于BODIPY的化学反应型氟离子荧光探针 | 第49-69页 |
| 2.1 引言 | 第49-50页 |
| 2.2 实验部分 | 第50-53页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第50-51页 |
| 2.2.2 合成步骤 | 第51-52页 |
| 2.2.3 吸收光谱和荧光光谱的测定方法 | 第52页 |
| 2.2.4 检出限的测定方法 | 第52页 |
| 2.2.5 荧光量子产率的测定方法 | 第52-53页 |
| 2.2.6 理论计算方法 | 第53页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第53-65页 |
| 2.3.1 A1-A3的合成方法 | 第53-60页 |
| 2.3.2 A1-A3的光物理性质 | 第60页 |
| 2.3.3 探针A3对氟离子的光谱响应 | 第60-61页 |
| 2.3.4 探针A3对氟离子的选择性和竞争性实验 | 第61-63页 |
| 2.3.5 探针A3对氟离子的识别机理 | 第63-64页 |
| 2.3.6 探针A3对氟离子响应的理论证明 | 第64-65页 |
| 2.4 本章小结 | 第65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 第三章 基于BODIPY的一系列近红外氟离子荧光探针 | 第69-91页 |
| 3.1 引言 | 第69-70页 |
| 3.2 实验部分 | 第70-75页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第70页 |
| 3.2.2 合成步骤 | 第70-74页 |
| 3.2.3 吸收光谱和荧光光谱的测定方法 | 第74-75页 |
| 3.2.4 检出限的测定方法 | 第75页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第75-88页 |
| 3.3.1 B1-B8的合成方法 | 第75-76页 |
| 3.3.2 B1-B8的光物理性质 | 第76页 |
| 3.3.3 探针B1-B8对氟离子的光谱响应 | 第76-83页 |
| 3.3.4 探针B1-B8的离子选择性 | 第83-84页 |
| 3.3.5 探针B1-B8与氟离子响应的动力学 | 第84-86页 |
| 3.3.6 探针B1-B8对氟离子的识别机理 | 第86-88页 |
| 3.4 本章小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-91页 |
| 第四章 同时检测氟离子和硫化氢的新型双功能荧光探针 | 第91-110页 |
| 4.1 引言 | 第91-92页 |
| 4.2 实验部分 | 第92-96页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第92页 |
| 4.2.2 合成步骤 | 第92-93页 |
| 4.2.3 吸收光谱和荧光光谱的测定方法 | 第93-94页 |
| 4.2.4 检出限的测定方法 | 第94页 |
| 4.2.5 荧光量子产率的测定方法 | 第94页 |
| 4.2.6 细胞毒性实验 | 第94-95页 |
| 4.2.7 活细胞成像实验 | 第95-96页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第96-106页 |
| 4.3.1 C1-C3的合成方法 | 第96页 |
| 4.3.2 C1的光物理性质 | 第96-97页 |
| 4.3.3 探针C1对F~-和HS~-的光谱响应 | 第97-99页 |
| 4.3.4 探针C1对F~-和HS~-的离子选择性 | 第99-101页 |
| 4.3.5 探针C1对F~-和HS~-的动力学 | 第101-102页 |
| 4.3.6 pH对探针C1识别HS~-的影响 | 第102-103页 |
| 4.3.7 探针C1对F~-和HS~-的识别机理 | 第103-105页 |
| 4.3.8 探针C1的细胞毒性 | 第105-106页 |
| 4.3.9 探针C1的细胞成像 | 第106页 |
| 4.4 本章小结 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-110页 |
| 第五章 基于ANCA结构的检测淀粉样蛋白的新型荧光探针 | 第110-130页 |
| 5.1 引言 | 第110-111页 |
| 5.2 实验部分 | 第111-123页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第111-112页 |
| 5.2.2 合成步骤 | 第112-121页 |
| 5.2.3 β-淀粉样多肽聚集体(Aβ_(42))的制备 | 第121页 |
| 5.2.4 胰岛素纤维的制备 | 第121页 |
| 5.2.5 吸收光谱和荧光光谱的测定 | 第121页 |
| 5.2.6 Aβ_(42)与探针的亲和力检测 | 第121-122页 |
| 5.2.7 脂水分配系数log P | 第122页 |
| 5.2.8 组织切片染色 | 第122页 |
| 5.2.9 荧光显微成像 | 第122-123页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第123-128页 |
| 5.3.1 ANCA 1-3的合成 | 第123-124页 |
| 5.3.2 ANCA 1-3对淀粉样蛋白的光谱响应 | 第124-127页 |
| 5.3.3 ANCA 1-3的组织成像 | 第127-128页 |
| 5.4 本章小结 | 第128-129页 |
| 参考文献 | 第129-130页 |
| 第六章 D-π-A型近红外荧光探针的合成及对淀粉样蛋白的检测 | 第130-145页 |
| 6.1 引言 | 第130页 |
| 6.2 实验部分 | 第130-134页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第130-131页 |
| 6.2.2 合成步骤 | 第131-133页 |
| 6.2.3 Aβ_(42)和胰岛素纤维的制备 | 第133页 |
| 6.2.4 吸收光谱和荧光光谱的测定方法 | 第133-134页 |
| 6.2.5 Aβ_(42)与探针的亲和力检测 | 第134页 |
| 6.2.6 脂水分配系数log P | 第134页 |
| 6.2.7 组织切片的染色及荧光显微成像 | 第134页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第134-143页 |
| 6.3.1 Py 1-3的合成方法 | 第134-135页 |
| 6.3.2 Py 1-3对淀粉样蛋白的光谱响应 | 第135-138页 |
| 6.3.3 Py-1与Py-3的组织成像 | 第138-139页 |
| 6.3.4 分子对接模拟计算 | 第139-143页 |
| 6.4 本章小结 | 第143页 |
| 参考文献 | 第143-145页 |
| 总结与展望 | 第145-146页 |
| 攻博期间发表的论文 | 第146-147页 |
| 致谢 | 第147-148页 |
