| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 蛋白质纯化 | 第13-16页 |
| 1.1.1 蛋白质纯化的意义 | 第13页 |
| 1.1.2 纯化蛋白质常用的方法 | 第13-16页 |
| 1.1.3 问题与展望 | 第16页 |
| 1.2 磁性固相萃取技术 | 第16-18页 |
| 1.2.1 磁性固相萃取技术简介 | 第16-17页 |
| 1.2.2 磁性颗粒的表面修饰 | 第17页 |
| 1.2.3 问题与展望 | 第17-18页 |
| 1.3 低共熔溶剂 | 第18-21页 |
| 1.3.1 低共熔溶剂的组成 | 第18页 |
| 1.3.2 低共熔溶剂的合成 | 第18-19页 |
| 1.3.3 低共熔溶剂的性质 | 第19-20页 |
| 1.3.4 低共熔溶剂的应用 | 第20-21页 |
| 1.3.5 问题与展望 | 第21页 |
| 1.4 离子液体 | 第21-25页 |
| 1.4.1 离子液体的发展历史 | 第21-22页 |
| 1.4.2 离子液体的组成 | 第22页 |
| 1.4.3 离子液体的合成 | 第22-23页 |
| 1.4.4 离子液体的特点 | 第23-24页 |
| 1.4.5 离子液体的应用 | 第24页 |
| 1.4.6 问题与展望 | 第24-25页 |
| 1.5 聚合离子液体 | 第25页 |
| 1.5.1 聚合离子液体概述 | 第25页 |
| 1.5.2 问题与展望 | 第25页 |
| 1.6 本课题的研究意义与研究内容 | 第25-27页 |
| 1.6.1 本课题的研究背景与意义 | 第25-26页 |
| 1.6.2 本课题的研究内容 | 第26-27页 |
| 第2章 氯化胆碱类低共熔溶剂修饰的磁性氧化石墨烯固相萃取蛋白质 | 第27-43页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-32页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.2 低共熔溶剂修饰的磁性颗粒(Fe_3O_4@GO-DES)的制备 | 第29-31页 |
| 2.2.3 磁性固相萃取实验 | 第31-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-42页 |
| 2.3.1 低共熔溶剂的表征 | 第32页 |
| 2.3.2 Fe_3O_4@GO-DES颗粒的表征 | 第32-36页 |
| 2.3.3 单因素实验 | 第36-38页 |
| 2.3.4 Fe_3O_4@GO和Fe_3O_4@GO-DES萃取容量的比较 | 第38-39页 |
| 2.3.5 洗脱与重复利用实验 | 第39-41页 |
| 2.3.6 方法学考察 | 第41-42页 |
| 2.4 小结 | 第42-43页 |
| 第3章 甜菜碱类离子液体修饰的磁性颗粒固相萃取蛋白质 | 第43-59页 |
| 3.1 引言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验部分 | 第44-47页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.2 离子液体修饰的磁性颗粒(Fe_3O_4/APTES/GO/IL)的制备 | 第45-46页 |
| 3.2.3 Zeta电势的测量 | 第46页 |
| 3.2.4 磁性固相萃取实验 | 第46-47页 |
| 3.2.5 实际样品的萃取实验 | 第47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-58页 |
| 3.3.1 离子液体的表征 | 第47-48页 |
| 3.3.2 Fe_3O_4/APTES/GO/IL颗粒的表征 | 第48-53页 |
| 3.3.3 单因素实验 | 第53-55页 |
| 3.3.4 Fe_3O_4、Fe_3O_4/APTES/GO和Fe_3O_4/APTES/GO/IL萃取容量的比较 | 第55-56页 |
| 3.3.5 洗脱与重复利用实验 | 第56-57页 |
| 3.3.6 实际样品的萃取实验 | 第57-58页 |
| 3.3.7 方法学考察 | 第58页 |
| 3.4 小结 | 第58-59页 |
| 第4章 聚合离子液体修饰的磁性颗粒固相萃取胰蛋白酶 | 第59-71页 |
| 4.1 引言 | 第59-60页 |
| 4.2 实验部分 | 第60-63页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第60-61页 |
| 4.2.2 聚合离子液体修饰的磁性颗粒(Fe_3O_4/SiO_2/γ-MPS/PIL)的制备 | 第61页 |
| 4.2.3 磁性固相萃取实验 | 第61-62页 |
| 4.2.4 胰蛋白酶的活性测定 | 第62-63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-70页 |
| 4.3.1 Fe_3O_4/SiO_2/γ-MPS/PIL颗粒的表征 | 第63-67页 |
| 4.3.2 萃取对象的选择 | 第67页 |
| 4.3.3 单因素实验 | 第67-68页 |
| 4.3.4 Fe_3O_4/SiO_2、Fe_3O_4/SiO_2/γ-MPS和Fe_3O_4/SiO_2/γ-MPS/PIL萃取容量的比较 | 第68页 |
| 4.3.5 洗脱与重复利用实验 | 第68-69页 |
| 4.3.6 胰蛋白酶的活性分析 | 第69页 |
| 4.3.7 方法学考察 | 第69-70页 |
| 4.4 小结 | 第70-71页 |
| 结论与展望 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-86页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
