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MiR-182靶向p53调控急性心肌梗死中细胞凋亡的作用机制

摘要第4-7页
ABSTRACT第7-10页
缩略词表第13-14页
前言第14-18页
1 材料与方法第18-34页
    1.1 实验动物第18页
    1.2 主要仪器第18-19页
    1.3 主要试剂与材料第19页
    1.4 主要溶剂配方第19-23页
    1.5 实验方法第23-34页
        1.5.1 建模手术操作步骤第23-24页
        1.5.2 TTC染色第24页
        1.5.3 血清及组织样本收集第24-25页
        1.5.4 HE染色第25页
        1.5.5 TUNEL第25-26页
        1.5.6 qPCR检测miRNA的表达差异情况第26-28页
            (一)Trizol法提取RNA第26-27页
            (二)miRNA的反转录第27页
            (三)miRNA的qPCR检测第27-28页
        1.5.7 Western Blotting(WB)第28-30页
            (一)蛋白质的提取及BCA法测定蛋白浓度第28-29页
            (二)WB第29-30页
        1.5.8 免疫组化第30-31页
        1.5.9 H9C2细胞缺氧模型及鉴定第31-33页
            (一)细胞缺氧模型建立第31-32页
            (二)H9C2缺氧模型乳酸脱氢酶检测(LDH)第32页
            (三)H9C2细胞缺氧模型细胞增殖活力实验(MTS)第32页
            (四)H9C2细胞缺氧模型caspase 3/7 活性检测第32-33页
        1.5.10 核质分离第33页
        1.5.11 统计学分析第33-34页
2 结果第34-45页
    2.1 大鼠急性心肌梗死模型的构建及鉴定第34-35页
    2.2 TUNEL鉴定大鼠心肌梗死后心肌细胞凋亡增多第35-36页
    2.3 大鼠心脏梗死区MIRNA的表达情况第36-37页
    2.4 AMI后MIR-182 下游靶点蛋白P53表达上调第37-38页
    2.5 心肌组织核质分离实验第38-39页
    2.6 P53下游凋亡蛋白表达升高第39-40页
    2.7 H9C2心肌细胞缺氧 6H后MTS,LDH,CASPASE3/7 活性检测第40-41页
    2.8 H9C2心肌细胞缺氧6小时后MIR-182 表达下调第41-42页
    2.9 H9C2心肌细胞核质分离后MIR-182 下游靶点蛋白的表达情况第42-45页
3 讨论第45-49页
结论第49-51页
参考文献第51-55页
综述第55-71页
    参考文献第64-71页
致谢第71-72页
在读期间参加的学术活动及研究成果第72-73页

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