前言 | 第4-6页 |
摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
英文缩略词表 | 第16-17页 |
第1章 文献综述 | 第17-38页 |
1.1 CIA模型的选择及建立 | 第17-21页 |
1.1.1 选择Ⅱ胶原蛋白建立动物模型的依据 | 第17-18页 |
1.1.2 CIA模型的评价 | 第18-19页 |
1.1.3 CIA的发病机制 | 第19页 |
1.1.4 CIA模型的特点 | 第19-21页 |
1.2 细胞凋亡机制障碍与类风湿关节炎病因学研究 | 第21-26页 |
1.3 微小RNA在类风湿关节炎中的研究进展 | 第26-38页 |
1.3.1 miRNA的调节免疫作用 | 第26-27页 |
1.3.2 miRNA与类风湿关节炎 | 第27-30页 |
1.3.3 展望 | 第30-38页 |
第2章 CIA模型的建立及相关抗体的诱导的机制 | 第38-50页 |
2.1 引言 | 第38页 |
2.2 实验材料 | 第38-39页 |
2.2.1 主要试剂 | 第38-39页 |
2.2.2 主要仪器 | 第39页 |
2.2.3 实验动物的来源 | 第39页 |
2.3 实验方法 | 第39-43页 |
2.3.1 实验分组及模型的制备 | 第39-40页 |
2.3.2 鼠的个体认定 | 第40-41页 |
2.3.3 检测项目 | 第41-43页 |
2.3.4 统计学方法 | 第43页 |
2.4 实验结果 | 第43-47页 |
2.4.1 CIA小鼠的临床特点 | 第43-44页 |
2.4.2 病理学分析 | 第44-46页 |
2.4.3 测定抗CII抗体水平 | 第46页 |
2.4.4 CIA关节炎的严重程度与抗CII的IgG抗体效价间的关系 | 第46-47页 |
2.5 讨论 | 第47-50页 |
第3章 白芍总苷诱导CIA鼠免疫细胞和滑膜细胞凋亡及相关细胞因子和蛋白表达的研究 | 第50-78页 |
3.1 引言 | 第50页 |
3.2 实验材料及方法 | 第50-54页 |
3.2.1 实验分组 | 第50页 |
3.2.2 给药方案 | 第50页 |
3.2.3 实验试剂及实验仪器 | 第50-51页 |
3.2.4 实验方案及步骤 | 第51-54页 |
3.3 实验结果 | 第54-74页 |
3.3.1 组织形态的改变 | 第54-55页 |
3.3.2 细胞凋亡的检测结果 | 第55-67页 |
3.3.3 脾脏淋巴细胞的增殖反应 | 第67-69页 |
3.3.4 TGP对小鼠骨髓细胞细胞周期的影响 | 第69-72页 |
3.3.5 相关细胞因子在各组中的表达 | 第72-74页 |
3.4 讨论 | 第74-78页 |
3.4.1 TGP对CIA鼠关节的治疗作用 | 第74-75页 |
3.4.2 TGP对CIA鼠淋巴细胞凋亡及增殖反应的影响 | 第75页 |
3.4.3 TGP对CIA鼠骨髓细胞细胞周期的影响 | 第75-76页 |
3.4.4 TGP对CIA鼠相关细胞因子表达的影响 | 第76-78页 |
第4章 白芍总苷对CIA鼠滑膜细胞MIR-15A及BCL-2、CASPASE3表达的影响 | 第78-88页 |
4.1 前言 | 第78页 |
4.2 实验材料 | 第78-80页 |
4.2.1 主要仪器 | 第78-79页 |
4.2.2 主要试剂 | 第79-80页 |
4.3 实验方法 | 第80-83页 |
4.3.1 分组及给药 | 第80页 |
4.3.2 实时定量RT-PCR检测miR-15a含量 | 第80-81页 |
4.3.3 Bc1-2蛋白水平检测——Western免疫印迹分析 | 第81-83页 |
4.3.4 bc1-2、caspase 3蛋白水平检测—免疫荧光染色 | 第83页 |
4.3.5 统计学方法 | 第83页 |
4.4 实验结果 | 第83-86页 |
4.4.1 CIA鼠滑膜中miR-15a的表达下调,Bc1-2表达上调 | 第83页 |
4.4.2 TGP治疗组miR-15a表达上调,Bc1-2表达下调 | 第83-85页 |
4.4.3 TGP治疗组caspase 3表达增加 | 第85-86页 |
4.5 讨论 | 第86-88页 |
4.5.1 TGP与类风湿关节炎滑膜细胞凋亡 | 第86-87页 |
4.5.2 miR-15a与细胞凋亡 | 第87页 |
4.5.3 TGP及miR-15a与滑膜细胞凋亡 | 第87-88页 |
第5章 结论 | 第88-89页 |
参考文献 | 第89-93页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第93-94页 |
致谢 | 第94页 |