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薄壳山核桃遗传转化体系的构建

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
1 文献综述第11-24页
    1.1 GA20OX基因与植物矮化的研究进展第11-14页
        1.1.1 GA20ox基因的概述第11页
        1.1.2 GA20ox基因的表达调控第11-13页
            1.1.2.1 时空表达第11-12页
            1.1.2.2 光信号表达调控第12页
            1.1.2.3 植物激素表达调控第12-13页
        1.1.3 GA20ox基因对植物矮化的影响第13-14页
        1.1.4 GA20ox基因的国内外研究进展与展望第14页
    1.2 木本植物遗传转化体系的研究第14-23页
        1.2.1 导入木本植物的外源基因类型第14-15页
        1.2.2 影响农杆菌介导木本植物遗传转化效率的因素第15-18页
            1.2.2.1 转化受体材料的选择第15-16页
            1.2.2.2 受体基因型对遗传转化效率的影响第16页
            1.2.2.3 选择压对遗传转化效率的影响第16-17页
            1.2.2.4 农杆菌的类型对遗传转化效率的影响第17页
            1.2.2.5 菌液浓度与侵染时间对遗传转化效率的影响第17页
            1.2.2.6 共培养对遗传转化效率的影响第17-18页
        1.2.3 木本植物遗传转化的方法第18-20页
            1.2.3.1 基因枪介导的遗传转化第18-19页
            1.2.3.2 农杆菌介导的遗传转化第19页
            1.2.3.3 花粉管通道法第19-20页
            1.2.3.4 其它方法第20页
        1.2.4 报告基因第20-22页
            1.2.4.1 β一葡萄糖苷酸酶基因第21页
            1.2.4.2 新霉素磷酸转移酶Ⅱ基因第21页
            1.2.4.3 荧光蛋白基因第21-22页
        1.2.5 转基因植株的鉴定第22-23页
            1.2.5.1 PCR检测第22页
            1.2.5.2 Southern杂交第22-23页
            1.2.5.3 其它检测方法第23页
    1.3 本研究的背景、目的及意义第23-24页
2 薄壳山核桃体胚成熟与萌发条件的优化第24-34页
    2.1 实验材料第24-25页
        2.1.1 植物材料第24页
        2.1.2 实验仪器第24页
        2.1.3 实验试剂与药品第24-25页
    2.2 实验方法第25-28页
        2.2.1 体胚干燥脱水第25页
        2.2.2 抗氧化酶活性的测定第25-27页
            2.2.2.1 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定第25-26页
            2.2.2.2 过氧化物酶(POD)活性的测定第26页
            2.2.2.3 过氧化氢酶(CAT)活性的测定第26-27页
        2.2.3 丙二醛(MDA)含量的测定第27页
        2.2.4 内源激素的测定第27-28页
        2.2.5 数据统计与处理第28页
    2.3 结果与分析第28-33页
        2.3.1 脱水干燥对体胚成熟与萌发的影响第28-29页
        2.3.2 抗氧化酶活性对体胚成熟与萌发的影响第29-31页
            2.3.2.1 体胚干燥过程中SOD活性的变化第29-30页
            2.3.2.2 体胚干燥过程中POD活性的变化第30-31页
            2.3.2.3 体胚干燥过程中CAT活性的变化第31页
        2.3.3 MDA含量对体胚成熟与萌发的影响第31-32页
        2.3.4 内源激素对体胚成熟与萌发的影响第32-33页
    2.4 本章小结第33-34页
3 农杆菌介导薄壳山核桃遗传转化体系的建立第34-50页
    3.1 实验材料第34-36页
        3.1.1 植物材料第34页
        3.1.2 农杆菌菌株及干扰载体第34页
        3.1.3 主要仪器设备第34-35页
        3.1.4 实验试剂与药品第35-36页
        3.1.5 转化过程中所用的培养基第36页
    3.2 实验方法第36-43页
        3.2.1 遗传转化条件的研究第36-37页
            3.2.1.1 羧苄青霉素敏感性试验第36-37页
            3.2.1.2 潮霉素敏感性试验第37页
            3.2.1.3 菌液浓度对转化的影响第37页
            3.2.1.4 侵染时间对转化的影响第37页
        3.2.2 农杆菌的培养与活化第37页
        3.2.3 农杆菌侵染及共培养第37页
        3.2.4 筛选培养第37-38页
        3.2.5 GUS瞬间表达检测第38页
        3.2.6 转基因体胚的PCR分子鉴定第38-41页
            3.2.6.1 体胚总RNA提取第38-39页
            2.2.6.2 RNA检测第39页
            3.2.6.3 cDNA的合成第39-40页
            3.2.6.4 PCR检测体系第40-41页
        3.2.7 转基因体胚的qRT-PCR分子鉴定第41-42页
        3.2.8 实验数据统计与图像处理第42-43页
    3.3 结果与分析第43-49页
        3.3.1 体胚抗生素选择压的确定第43-45页
            3.3.1.1 羧苄青霉素选择压的筛选第43页
            3.3.1.2 潮霉素选择压的筛选第43-45页
        3.3.2 不同菌液浓度对体胚转化的影响第45页
        3.3.3 不同侵染时间对体胚转化的影响第45-46页
        3.3.4 抗性体胚筛选第46页
        3.3.5 转基因体胚的GUS染色结果第46-47页
        3.3.6 转基因体胚的分子生物学检测第47-49页
            3.3.6.1 转基因体胚的PCR检测第47-48页
            3.3.6.2 转基因体胚的qRT-PCR检测第48-49页
    3.4 本章小结第49-50页
4 讨论第50-53页
    4.1 关于体细胞胚成熟及萌发再生植株第50页
    4.2 抗氧化酶活性在体胚发育与成熟过程中的作用第50-51页
    4.3 木本植物遗传转化存在的问题第51页
    4.4 转化受体材料选择的问题第51页
    4.5 选择压力的问题第51-52页
    4.6 转化体胚假阳性的问题第52页
    4.7 遗传转化体系优化的问题第52-53页
参考文献第53-64页
个人简介第64-65页
致谢第65页

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