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天然产物D182对小鼠肠炎的治疗作用及其分子机制

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
目录第9-12页
縮略词表第12-14页
前言第14-16页
第一章 TLRs受体及其信号通路的研究进展第16-21页
    1.1 TLRs受体第16-17页
    1.2 TLRs介导的信号通路第17-19页
        1.2.1 MyD88依赖的信号通路第17-18页
        1.2.2 TRIF依赖的信号通路第18-19页
    1.3 TLRs信号通路的负反馈因子第19页
    1.4 TLRs与免疫疾病以及靶向TLRs及信号通路药物的研究第19-21页
第二章 D182改善小鼠炎症性肠病的发病进程第21-28页
    2.1 引言第21页
    2.2 实验材料第21-22页
        2.2.1 实验对象第21页
        2.2.2 主要试剂第21页
        2.2.3 主要仪器设备第21-22页
    2.3 实验方法第22-24页
        2.3.1 实验动物分组第22页
        2.3.2 小鼠急性肠炎模型的诱导第22页
        2.3.3 小鼠体重及疾病活动指数实验第22-23页
        2.3.4 ELISA检测小鼠结肠部位相关炎性因子的表达水平第23页
        2.3.5 HE染色观察小鼠结肠组织损伤第23-24页
        2.3.6 数据统计分析第24页
    2.4 实验结果与分析第24-27页
        2.4.1 D182可显著改善DSS诱导的小鼠急性肠炎的相关宏观症状第24-26页
        2.4.2 D182抑制DSS诱导小鼠结肠部位的炎症因子IL-1β、IL-6和TNFα的产生第26-27页
    2.5 讨论第27-28页
第三章 D182抑制TLRs诱导的小鼠巨噬细胞炎性因子的产生第28-43页
    3.1 引言第28页
    3.2 实验材料第28-29页
        3.2.1 实验对象第28页
        3.2.2 主要试剂第28页
        3.2.3 主要仪器设备第28-29页
    3.3 实验方法第29-34页
        3.3.1 免疫组化检测结肠粘膜固有层部位巨噬细胞的浸润第29-30页
        3.3.2 小鼠腹腔巨噬细胞的获取与鉴定第30-31页
        3.3.3 细胞毒性实验第31页
        3.3.4 ELISA及Griess Reagent检测小鼠巨噬细胞炎性因子的分泌第31-33页
        3.3.5 Q-PCR检测RAW264.7细胞炎性因子表达第33-34页
        3.3.6 数据统计分析第34页
    3.4 实验结果与分析第34-41页
        3.4.1 D182减少巨噬细胞向结肠部位的迁移第34-35页
        3.4.2 D182不影响小鼠巨噬细胞的细胞活力第35-36页
        3.4.3 D182在基因和蛋白水平上抑制TLR2/6和TLR4配体诱导的RAW264.7细胞系炎性因子的产生第36-39页
        3.4.4 D182在基因和蛋白水平上抑制TLR2/6和TLR4配体诱导的小鼠原代腹腔巨噬细胞相关炎性因子的产生第39-41页
    3.5 讨论第41-43页
第四章 D182下调炎性因子表达的分子机制第43-50页
    4.1 引言第43页
    4.2 实验材料第43-44页
        4.2.1 实验对象第43页
        4.2.2 主要试剂第43页
        4.2.3 主要仪器设备第43-44页
    4.3 实验方法第44-46页
        4.3.1 模拟分子对接实验第44页
        4.3.2 Western bolt第44-45页
        4.3.3 结肠部位炎症相关通路活化的分析第45页
        4.3.4 数据统计分析第45-46页
    4.4 实验结果与分析第46-48页
        4.4.1 模拟分子对接显示D182与IRAK4有结合第46页
        4.4.2 体外验证D182与IRAK4存在结合第46-48页
        4.4.3 D182抑制结肠部位IRAK4和NF-κB的活化第48页
    4.5 讨论第48-50页
结论第50-51页
参考文献第51-59页
附录第59-62页
硕士期间科研成果第62-63页
致谢第63-64页

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