| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-21页 |
| 1.1 课题背景及研究的目的和意义 | 第9-10页 |
| 1.1.1 课题来源 | 第9页 |
| 1.1.2 研究目的及意义 | 第9-10页 |
| 1.2 肿瘤发生机制及黑色素瘤研究进展 | 第10-14页 |
| 1.2.1 肿瘤发生机制的学说演变 | 第10-11页 |
| 1.2.2 Nodal-Cripto-1 信号转导途径在肿瘤发生中的作用 | 第11-13页 |
| 1.2.3 黑色素瘤治疗研究进展 | 第13-14页 |
| 1.3 细胞微囊化缓释系统的研究与改进 | 第14-18页 |
| 1.3.1 高分子半透膜的保护作用和机制 | 第15-16页 |
| 1.3.2 半透膜通透性的控制 | 第16-17页 |
| 1.3.3 细胞微囊化材料选取 | 第17页 |
| 1.3.4 微囊的形状 | 第17页 |
| 1.3.5 细胞微囊化技术的临床应用 | 第17-18页 |
| 1.3.6 细胞微囊化技术的挑战 | 第18页 |
| 1.4 本课题的主要研究内容 | 第18-21页 |
| 1.4.1 稳定缓释信号分子的细胞株的制备和获取 | 第18-19页 |
| 1.4.2 微囊化细胞缓释 Lefty 用于 B16 肿瘤治疗的研究 | 第19-20页 |
| 1.4.3 微囊化细胞缓释抗 Cripto-1 单克隆抗体用于 B16 肿瘤治疗的研究 | 第20页 |
| 1.4.4 课题主要实验路线图 | 第20-21页 |
| 第2章 实验材料和方法 | 第21-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-25页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第21页 |
| 2.1.2 实验材料和动物 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要仪器及耗材 | 第22-23页 |
| 2.1.4 主要分析软件 | 第23页 |
| 2.1.5 培养基及配制 | 第23页 |
| 2.1.6 缓冲液及其他溶液的配制 | 第23-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-33页 |
| 2.2.1 高压静电法制备海藻酸钠微囊 | 第25-26页 |
| 2.2.2 稳定分泌抗 Cripto-1 小鼠单克隆抗体的细胞株的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.3 细胞微囊化用于黑色素瘤治疗的体外研究 | 第27-29页 |
| 2.2.4 细胞微囊化用于黑色素瘤治疗的体内研究 | 第29-33页 |
| 2.3 本章小结 | 第33-34页 |
| 第3章 细胞微囊缓释 Lefty 用于 B16 肿瘤逆转治疗的研究 | 第34-44页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 海藻酸钠微囊缓释系统的构建 | 第34-35页 |
| 3.3 微囊化细胞促进 B16 肿瘤细胞凋亡的检测 | 第35-36页 |
| 3.4 微囊化细胞用于肿瘤逆转的体内研究 | 第36-42页 |
| 3.4.1 B16 肿瘤模型在 ICR 小鼠体内的构建 | 第36-37页 |
| 3.4.2 微囊化细胞用于肿瘤治疗后瘤体大小及质量变化 | 第37-39页 |
| 3.4.3 ELISA 实验检测小鼠体内 Lefty 因子缓释情况 | 第39-40页 |
| 3.4.4 HE 染色进行肿瘤组织病理学研究 | 第40-42页 |
| 3.4.5 western-blot 测定治疗后肿瘤组织细胞 Nodal 抑制情况 | 第42页 |
| 3.5 讨论 | 第42-43页 |
| 3.6 本章小结 | 第43-44页 |
| 第4章 细胞微囊缓释 Cripto-1 抗体用于 B16 肿瘤逆转治疗的研究 | 第44-52页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 微囊化细胞用于肿瘤逆转的体内研究 | 第44-49页 |
| 4.2.1 微囊化细胞用于肿瘤治疗后瘤体大小及质量变化 | 第44-45页 |
| 4.2.2 HE 染色进行肿瘤组织病理学研究 | 第45-46页 |
| 4.2.3 免疫组织化学及 western-blot 探究肿瘤逆转治疗的机理 | 第46-49页 |
| 4.3 讨论 | 第49-50页 |
| 4.4 本章小结 | 第50-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
