摘要 | 第3-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
第1章 前言 | 第14-22页 |
1.1 木榄的概况 | 第14-17页 |
1.1.1 木榄的植物学特征 | 第14页 |
1.1.2 木榄的药用价值研究 | 第14-15页 |
1.1.3 木榄的化学成分 | 第15-16页 |
1.1.4 木榄的生物活性研究 | 第16-17页 |
1.2 糖尿病的概况 | 第17-19页 |
1.2.1 糖尿病的现状 | 第17页 |
1.2.2 糖尿病的类型 | 第17-18页 |
1.2.3 糖尿病的典型症 | 第18页 |
1.2.4 糖尿病对人体的危害 | 第18-19页 |
1.3 α-淀粉酶抑制剂国内外研究进展及现状 | 第19-21页 |
1.3.1 天然α-淀粉酶抑制剂的来源 | 第19-21页 |
1.3.2 α-淀粉酶的应用前景 | 第21页 |
1.4 课题的立题目的和意义 | 第21页 |
1.5 课题主要的研究内容 | 第21-22页 |
第2章 木榄胚轴胰α-淀粉酶抑制剂活性成分的提取溶剂筛选 | 第22-35页 |
2.1 材料与仪器 | 第22-24页 |
2.1.1 材料 | 第22页 |
2.1.2 主要的药品 | 第22页 |
2.1.3 主要的仪器 | 第22-23页 |
2.1.4 主要试剂的配制 | 第23-24页 |
2.2 方法 | 第24-27页 |
2.2.1 木榄胚轴胰α-淀粉酶抑制剂活性成分供试液的制备 | 第24页 |
2.2.2 胰α-淀粉酶抑制剂活性成分供试液筛选 | 第24-27页 |
2.3 胰α-淀粉酶抑制剂活性成分的提取溶剂筛选的结果 | 第27-33页 |
2.3.1 滤纸片筛选的结果 | 第27-30页 |
2.3.2 打洞法的抑制结果 | 第30-32页 |
2.3.3 α-淀粉酶活性测定的结果 | 第32-33页 |
2.3.4 Bernfeld法降糖活性测定结果 | 第33页 |
2.4 本章小结 | 第33-35页 |
第3章 木榄胚轴中胰α-淀粉酶抑制剂活性部位筛选 | 第35-40页 |
3.1 材料与仪器 | 第35页 |
3.1.1 材料 | 第35页 |
3.1.2 仪器 | 第35页 |
3.1.3 药品 | 第35页 |
3.1.4 主要试剂 | 第35页 |
3.2 方法 | 第35-36页 |
3.2.1 木榄胚轴活性成分提取液的制备 | 第35页 |
3.2.2 木榄胚轴活性成分的初步分离 | 第35-36页 |
3.2.3 木榄胚轴胰α-淀粉酶抑制活性部位的筛选 | 第36页 |
3.3 活性部位筛选结果 | 第36-40页 |
3.3.1 打洞法结果 | 第36-38页 |
3.3.2 Bernfeld法的结果 | 第38-40页 |
第4章 胰α-淀粉酶抑制剂的分离和纯化 | 第40-47页 |
4.1 材料与仪器 | 第40页 |
4.1.1 样品 | 第40页 |
4.1.2 仪器和设备 | 第40页 |
4.1.3 药品 | 第40页 |
4.2 方法 | 第40-42页 |
4.2.1 大孔吸附树脂的预处理 | 第40页 |
4.2.2 大孔吸附树脂的筛选 | 第40-41页 |
4.2.3 大孔吸附树脂法初步分离 | 第41页 |
4.2.4 硅胶柱层进一步纯化 | 第41-42页 |
4.3 结果与分析 | 第42-46页 |
4.3.1 大孔树脂筛选的结果 | 第42页 |
4.3.2 大孔树脂初步分离得结果 | 第42-43页 |
4.3.3 硅胶层析洗脱剂选择的结果 | 第43-44页 |
4.3.4 硅胶柱层析结果 | 第44-46页 |
4.4 本章小结 | 第46-47页 |
第5章 对胰α-淀粉酶具有抑制作用的物质进行性质鉴定及作用条件的研究 | 第47-54页 |
5.1 材料与仪器 | 第47-48页 |
5.1.1 材料 | 第47页 |
5.1.2 仪器 | 第47页 |
5.1.3 药品 | 第47-48页 |
5.2 方法 | 第48-49页 |
5.2.1 薄层层析鉴别 | 第48页 |
5.2.2 紫外光谱扫描 | 第48页 |
5.2.3 高效液相色谱测定 | 第48页 |
5.2.4 样品2的相对分子质量测定 | 第48-49页 |
5.2.5 胰α-淀粉酶抑制剂作用条件的研究 | 第49页 |
5.3 结果与分析 | 第49-53页 |
5.3.1 薄层层析实验结果 | 第49-51页 |
5.3.3 高效液相色谱测定结果 | 第51页 |
5.3.4 样品2的相对分子质量测定结果 | 第51-52页 |
5.3.5 胰α-淀粉酶抑制剂作用条件的研究 | 第52-53页 |
5.4 本章小结 | 第53-54页 |
第6章 胰α-淀粉酶抑制剂对HepG2细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第54-58页 |
6.1 材料与仪器 | 第54页 |
6.1.1 材料 | 第54页 |
6.1.2 药品 | 第54页 |
6.1.3 仪器 | 第54页 |
6.2 方法 | 第54-56页 |
6.2.1 试剂 | 第54-55页 |
6.2.3 HepG2的葡萄糖消耗实验及MTT实验培养 | 第55-56页 |
6.3 结果与分析 | 第56-58页 |
6.3.1 不同的样品浓度对HePG2细胞增殖及降糖消耗的影响 | 第56-58页 |
第7章 总结与问题 | 第58-61页 |
7.1 主要结论 | 第58-59页 |
7.2 问题与展望 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-66页 |
攻读硕士期间发表论文 | 第66-67页 |
致谢 | 第67-68页 |