| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 蜂蜜的有机活性组分概述 | 第13-15页 |
| 1.1.1 蜂蜜的生物学功能 | 第13-14页 |
| 1.1.2 蜂蜜中有机活性组分的作用 | 第14-15页 |
| 1.2 毛细管电泳概况 | 第15-19页 |
| 1.2.1 毛细管电泳法的基本原理及设备 | 第15-16页 |
| 1.2.3 毛细管电泳的分离模式 | 第16页 |
| 1.2.4 毛细管电泳在蜂蜜品质鉴定中的应用 | 第16-19页 |
| 1.3 高效液相色谱与电化学联用技术 | 第19-20页 |
| 1.3.1 高效液相色谱与电化学联用的概述 | 第19-20页 |
| 1.3.2 高效液相色谱与电化学联用的应用 | 第20页 |
| 1.4 研究的目的及意义 | 第20-21页 |
| 1.5 研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 毛细管区电泳快速分离和测定蜂蜜样品中的黄酮类化合物 | 第23-33页 |
| 2.1 前言 | 第23-24页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第24页 |
| 2.2.2 仪器 | 第24-25页 |
| 2.3 试验方法 | 第25-26页 |
| 2.3.1 标准溶液和实际样品的制备 | 第25-26页 |
| 2.3.2 电泳条件 | 第26页 |
| 2.4 结果与分析 | 第26-31页 |
| 2.4.1 分离条件的优化 | 第26页 |
| 2.4.2 溶液pH值对分离的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.3 运行缓冲液浓度对分离的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.4 电压对分离的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.5 温度对分离的影响 | 第29页 |
| 2.4.6 线性关系及检出限 | 第29-30页 |
| 2.4.7 蜂蜜样品的含量测定 | 第30-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-33页 |
| 第三章 在线场放大进样技术：一种使用高性能毛细管电泳确定河南省蜂蜜中有机酸含量的新方法 | 第33-45页 |
| 3.1 引言 | 第33-34页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第34-35页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第35页 |
| 3.3 试验方法 | 第35-36页 |
| 3.3.1 CE的条件 | 第35页 |
| 3.3.2 FASI-CE的条件 | 第35-36页 |
| 3.3.3 实际样品的制备 | 第36页 |
| 3.4 结果与分析 | 第36-43页 |
| 3.4.1 FASI的优化条件 | 第36页 |
| 3.4.2 pH值的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.3 缓冲溶液浓度的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.4 CTAB的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.5 水柱长度的影响 | 第39页 |
| 3.4.6 电压和进样时间的影响 | 第39-41页 |
| 3.4.7 FASI-CE和CE的比较 | 第41-42页 |
| 3.4.8 实际样品的分析 | 第42-43页 |
| 3.4.9 蜂蜜实际样品的回收率 | 第43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第四章 响应曲面优化-毛细管电泳法快速检测蜂蜜中的几种水溶性维生素 | 第45-55页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第45-46页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第46页 |
| 4.3 试验方法 | 第46-47页 |
| 4.3.1 标准样品和实际样品的制备 | 第46页 |
| 4.3.2 高效毛细管电泳条件 | 第46页 |
| 4.3.3 CE分离条件的响应面试验设计 | 第46-47页 |
| 4.4 结果与分析 | 第47-52页 |
| 4.4.1 Box-Behnken设计与结果 | 第47-48页 |
| 4.4.2 二次回归模型建立与方差分析 | 第48-50页 |
| 4.4.3 出峰最晚物质的保留时间和最大分离度的响应曲面分析 | 第50-51页 |
| 4.4.4 最佳条件确定及验证 | 第51-52页 |
| 4.4.5 精密度实验 | 第52页 |
| 4.5 蜂蜜样品中水溶性维生素的分离与定量分析 | 第52-53页 |
| 4.5.1 标准曲线的绘制 | 第52页 |
| 4.5.2 蜂蜜中水溶性维生素的毛细管电泳分离与定量分析 | 第52-53页 |
| 4.6 本章小结 | 第53-55页 |
| 第五章 高效液相色谱-电化学联用法测定蜂蜜中的维生素C | 第55-71页 |
| 5.1 前言 | 第55-56页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第56-57页 |
| 5.2.1 仪器和试剂 | 第56-57页 |
| 5.3 试验方法 | 第57-59页 |
| 5.3.1 玻碳电极的清洗 | 第57页 |
| 5.3.2 玻碳电极的活化处理 | 第57页 |
| 5.3.3 玻碳电极对多巴胺和维生素C的电化学响应实验 | 第57页 |
| 5.3.4 维生素C标准溶液 | 第57-58页 |
| 5.3.5 多巴胺标准溶液 | 第58页 |
| 5.3.6 维C银翘片前处理 | 第58页 |
| 5.3.7 盐酸溶液的稀释 | 第58页 |
| 5.3.8 固相萃取柱的预处理 | 第58页 |
| 5.3.9 蜂蜜样品预处理 | 第58-59页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第59-69页 |
| 5.4.1 多巴胺和维生素C在玻碳电极上的电化学行为 | 第59-61页 |
| 5.4.2 玻碳电极对多巴胺和维生素C的选择性 | 第61页 |
| 5.4.3 工作电位选择 | 第61页 |
| 5.4.4 色谱条件的优化选择 | 第61-64页 |
| 5.4.5 标准曲线与检出限 | 第64-65页 |
| 5.4.6 精密度 | 第65-66页 |
| 5.4.7 实际样品及回收率的测定 | 第66-69页 |
| 5.5 本章小结 | 第69-71页 |
| 第六章 反相高效液相色谱与电化学联用检测并分析蜂蜜中的3种有机酸活性化合物 | 第71-85页 |
| 6.1 引言 | 第71页 |
| 6.2 实验试剂与仪器 | 第71-72页 |
| 6.3 试验方法 | 第72页 |
| 6.3.1 色谱条件 | 第72页 |
| 6.3.2 标准溶液的制备 | 第72页 |
| 6.3.3 样品制备 | 第72页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第72-83页 |
| 6.4.1 样品制备优化 | 第72-73页 |
| 6.4.2 玻碳电极对三种有机酸混合物的选择性 | 第73页 |
| 6.4.3 色谱条件的优化 | 第73-77页 |
| 6.4.4 方法验证 | 第77-83页 |
| 6.5 结论 | 第83-85页 |
| 第七章 全文总结 | 第85-87页 |
| 7.1 总结 | 第85-86页 |
| 7.2 展望 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-99页 |
| 致谢 | 第99-101页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第101页 |
