| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-13页 |
| 英文摘要 | 第13-19页 |
| 前言 | 第20-22页 |
| 文献回顾 | 第22-33页 |
| 第一部分 HPDLSCS和PPDLSCS对不同级别SMS的反应及最佳力值筛选 | 第33-60页 |
| 实验一 HPDLSCS和PPDLSCS的培养、鉴定及SMS加载装置的建立 | 第35-45页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 1.1 主要仪器 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 2 方法 | 第36-39页 |
| 2.1 HPDLSCs和PPDLSCs的细胞来源 | 第36页 |
| 2.2 HPDLSCs和PPDLSCs的细胞原代培养及纯化 | 第36-37页 |
| 2.3 HPDLSCs和PPDLSCs的生物学特性鉴定 | 第37-38页 |
| 2.4 SMS加载装置的构建 | 第38页 |
| 2.5 统计学分析 | 第38-39页 |
| 3 结果 | 第39-43页 |
| 3.1 HPDLSCs及PPDLSCs形态学观察 | 第39页 |
| 3.2 HPDLSCs及PPDLSCs表面分子表型鉴定 | 第39-40页 |
| 3.3 HPDLSCs及PPDLSCs克隆形成能力鉴定 | 第40-41页 |
| 3.4 HPDLSCs及PPDLSCs多向分化能力鉴定 | 第41-43页 |
| 3.5 SMS加载装置的构建 | 第43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 实验二 不同级别SMS对HPDLSCS和PPDLSCS增殖及成骨能力的影响 | 第45-55页 |
| 1 材料 | 第45-46页 |
| 1.1 主要仪器 | 第45页 |
| 1.2 主要试剂 | 第45-46页 |
| 2 方法 | 第46-48页 |
| 2.1 HPDLSCs及PPDLSCs的增殖能力检测 | 第46页 |
| 2.2 HPDLSCs及PPDLSCs的成骨能力检测 | 第46-48页 |
| 2.3 统计学分析 | 第48页 |
| 3 结果 | 第48-53页 |
| 3.1 不同级别SMS对HPDLSCs和PPDLSCs增殖能力的影响 | 第48-50页 |
| 3.2 不同级别SMS对HPDLSCs和PPDLSCs成骨能力的影响 | 第50-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 实验三 不同级别SMS对HPDLSCS和PPDLSCS破骨能力及炎症反应的影响 | 第55-60页 |
| 1 材料 | 第55页 |
| 1.1 主要试剂 | 第55页 |
| 1.2 主要仪器 | 第55页 |
| 2 方法 | 第55-57页 |
| 2.1 实时定量RT-PCR检测破骨相关基因表达 | 第55-56页 |
| 2.2 Elisa检测炎症因子的分泌水平 | 第56页 |
| 2.4 统计学分析 | 第56-57页 |
| 3 结果 | 第57-59页 |
| 3.1 不同级别SMS对HPDLSCs和PPDLSCs破骨基因表达的影响 | 第57页 |
| 3.2 不同级别SMS对HPDLSCs和PPDLSCs炎症因子分泌的影响 | 第57-59页 |
| 4 讨论 | 第59-60页 |
| 第二部分 12%SMS作用下HPDLSCS和PPDLSCS中LNCRNA芯片表达谱研究55 | 第60-93页 |
| 实验一 HPDLSCS和PPDLSCS芯片样品的制备、质控检测及基因芯片表达谱构建 | 第62-71页 |
| 1 材料 | 第62-63页 |
| 1.1 主要仪器 | 第62页 |
| 1.2 主要试剂 | 第62-63页 |
| 2 方法 | 第63-65页 |
| 2.1 HPDLSCs及PPDLSCs的细胞培养及SMS加载 | 第63页 |
| 2.2 HPDLSCs及PPDLSCs的总RNA提取 | 第63页 |
| 2.3 HPDLSCs及PPDLSCs的RNA纯化 | 第63-64页 |
| 2.4 HPDLSCs及PPDLSCs的RNA质检和浓度测定 | 第64页 |
| 2.5 HPDLSCs及PPDLSCs总RNA变性琼脂糖凝胶电泳检测 | 第64页 |
| 2.6 HPDLSCs及PPDLSCs的cDNA合成 | 第64页 |
| 2.7 cDNA的纯化、质检及标记 | 第64-65页 |
| 2.8 芯片杂交洗涤及扫描 | 第65页 |
| 2.9 数据分析 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-69页 |
| 3.1 HPDLSCs和PPDLSCs样本RNA的分光光度计检测结果 | 第65-66页 |
| 3.2 HPDLSCs和PPDLSCs样本RNA的琼脂糖凝胶电泳检测结果 | 第66页 |
| 3.3 HPDLSCs和PPDLSCs样本RNA的箱图结果 | 第66-67页 |
| 3.4 HPDLSCs和PPDLSCs样本RNA的散点图结果 | 第67页 |
| 3.5 HPDLSCs和PPDLSCs样本RNA的火山图结果 | 第67-68页 |
| 3.6 HPDLSCs和PPDLSCs样本RNA的聚类分析及热图结果 | 第68-69页 |
| 4 讨论 | 第69-71页 |
| 实验二 HPDLSCS和PPDLSCS中LNCRNA的差异表达情况、功能分析及PCR验证 | 第71-93页 |
| 1 材料 | 第71页 |
| 2 方法 | 第71-72页 |
| 2.1 数据分析 | 第71页 |
| 2.2 KEGG（the database of Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)）生物学通路分析 | 第71页 |
| 2.3 GO（the Gene Ontology project）分析 | 第71页 |
| 2.4 CNC网络关系图构建及相关基因的功能注释 | 第71-72页 |
| 2.5 实时定量RT-PCR | 第72页 |
| 2.6 统计学分析 | 第72页 |
| 3 结果 | 第72-91页 |
| 3.1 12%SMS加载后HPDLSCs和PPDLSCs中差异表达的LncRNA | 第72-75页 |
| 3.2 12%SMS加载后HPDLSCs和PPDLSCs中差异表达的mRNA | 第75-78页 |
| 3.3 异常表达mRNA的生物信息学预测研究 | 第78-90页 |
| 3.4 实时定量RT-PCR验证 | 第90-91页 |
| 4 讨论 | 第91-93页 |
| 小结 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-104页 |
| 个人简历和研究成果 | 第104-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
