| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第12-23页 |
| 1.1 甜瓜起源与分类 | 第12-13页 |
| 1.2 我国甜瓜产区布局及生产贸易现状 | 第13-15页 |
| 1.2.1 我国甜瓜产区布局 | 第13-15页 |
| 1.2.2 我国甜瓜生产贸易现状 | 第15页 |
| 1.3 甜瓜遗传多样性分析 | 第15-19页 |
| 1.3.1 基于甜瓜形态学标记的遗传多样性分析 | 第16-17页 |
| 1.3.2 基于甜瓜细胞学标记的遗传多样性分析 | 第17页 |
| 1.3.3 基于甜瓜生化标记的遗传多样性分析 | 第17-18页 |
| 1.3.4 基于甜瓜分子标记的遗传多样性分析 | 第18-19页 |
| 1.4 DNA指纹图谱技术 | 第19-22页 |
| 1.4.1 DNA指纹图谱的概念及发现 | 第19页 |
| 1.4.2 常用DNA指纹图谱技术 | 第19-22页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第22页 |
| 1.6 研究主要内容 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.2 田间试验 | 第23-27页 |
| 2.2.1 田间试验时间与地点 | 第23页 |
| 2.2.2 田间试验设计 | 第23页 |
| 2.2.3 田间管理 | 第23-25页 |
| 2.2.4 田间果实性状调查方法 | 第25-26页 |
| 2.2.5 田间数据分析方法 | 第26-27页 |
| 2.3 分子标记试验 | 第27-31页 |
| 2.3.1 试验药品与仪器 | 第27页 |
| 2.3.2 分子试验设计 | 第27-28页 |
| 2.3.3 甜瓜供试材料DNA提取 | 第28-29页 |
| 2.3.4 甜瓜供试材料DNA检测 | 第29页 |
| 2.3.5 CAPS引物来源 | 第29页 |
| 2.3.6 CAPS-PCR反应体系及程序 | 第29-30页 |
| 2.3.7 CAPS-PCR产物酶切及电泳检测 | 第30页 |
| 2.3.8 分子标记数据分析方法 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-41页 |
| 3.1 果实性状遗传多样性与聚类分析 | 第31-36页 |
| 3.1.1 果实性状遗传多样性分析 | 第31-33页 |
| 3.1.2 果实性状聚类分析 | 第33-36页 |
| 3.2 CAPS标记指纹图谱构建与聚类分析 | 第36-41页 |
| 3.2.1 供试材料DNA提取 | 第36-37页 |
| 3.2.2 指纹图谱的构建 | 第37-38页 |
| 3.2.3 CAPS标记聚类分析 | 第38-41页 |
| 4 讨论 | 第41-44页 |
| 4.1 甜瓜供试材料的选择 | 第41页 |
| 4.2 甜瓜品种的鉴定 | 第41-43页 |
| 4.2.1 利用形态学标记分析甜瓜遗传多样性 | 第41-42页 |
| 4.2.2 利用CAPS标记分析甜瓜遗传多样性 | 第42页 |
| 4.2.3 形态学标记与CAPS标记在品种鉴定方面的对比 | 第42-43页 |
| 4.2.4 供试材料的区分 | 第43页 |
| 4.3 构建指纹图谱 | 第43-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 5.1 形态学标记 | 第44页 |
| 5.2 CAPS标记 | 第44页 |
| 5.3 指纹图谱构建 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 附录 | 第52-66页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第66页 |