| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-15页 |
| 第一章 引言 | 第15-46页 |
| 1.1 水稻粒型的发育调控 | 第15-34页 |
| 1.1.1 引言 | 第15页 |
| 1.1.2 粒型是水稻产量的重要决定因素 | 第15-16页 |
| 1.1.3 粒型和粒重的遗传分析 | 第16页 |
| 1.1.4 已克隆的粒型相关基因 | 第16-31页 |
| 1.1.5 影响粒型和粒重的数量性状 | 第31-34页 |
| 1.1.6 展望 | 第34页 |
| 1.2 油菜素内酯（BR）的研究进展 | 第34-46页 |
| 1.2.1 引言 | 第34页 |
| 1.2.2 油菜素内酯的生物合成途径 | 第34-36页 |
| 1.2.3 BR生物合成途径的调节机制 | 第36-39页 |
| 1.2.4 油菜素内酯（BR）的信号调节途径 | 第39-41页 |
| 1.2.5 油菜素内酯的降解途径 | 第41页 |
| 1.2.6 油菜素内酯的功能 | 第41-44页 |
| 1.2.7 油菜素内酯与其他激素的协调作用 | 第44-45页 |
| 1.2.8 油菜素内酯的应用 | 第45-46页 |
| 第二章 水稻粒宽基因qGW12的QTL计算和精细定位 | 第46-62页 |
| 2.1 试验材料 | 第46页 |
| 2.1.1 亲本材料 | 第46页 |
| 2.1.2 性状考察 | 第46页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第46页 |
| 2.2 实验方法 | 第46-50页 |
| 2.2.1 群体构建 | 第46-47页 |
| 2.2.2 DNA提取步骤 | 第47-48页 |
| 2.2.3 序列及数据分析软件 | 第48页 |
| 2.2.4 定位引物的发展 | 第48-49页 |
| 2.2.5 聚合酶链式反应（PCR反应） | 第49-50页 |
| 2.2.6 琼脂糖凝胶电泳实验 | 第50页 |
| 2.2.7 DNA产物的纯化 | 第50页 |
| 2.2.8 测序 | 第50页 |
| 2.3 实验结果 | 第50-61页 |
| 2.3.1 亲本材料的表型描述 | 第50-51页 |
| 2.3.2 BC1F2群体粒型性状的QTL定位 | 第51-56页 |
| 2.3.3 对BC1F2群体粒型性状中主效QTL q GW12的精细定位 | 第56-61页 |
| 2.3.3.1 组合中qGW12位点的确认 | 第56-58页 |
| 2.3.3.2 qGW12基因的精细定位 | 第58-60页 |
| 2.3.3.3 构建不同背景的近等基因系 | 第60-61页 |
| 2.4 讨论 | 第61-62页 |
| 2.4.1 基因定位的准确性 | 第61页 |
| 2.4.2 稻种资源的挖掘 | 第61-62页 |
| 第三章 水稻粒长调控基因SG4的克隆和功能验证 | 第62-85页 |
| 3.1 试验材料 | 第62页 |
| 3.1.1 亲本材料 | 第62页 |
| 3.1.2 群体构建 | 第62页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第62页 |
| 3.1.4 实验常用载体 | 第62页 |
| 3.1.5 实验分析软件 | 第62页 |
| 3.2 实验方法 | 第62-71页 |
| 3.2.1 花粉活力检测 | 第62-63页 |
| 3.2.2 扫描电镜切片的制作 | 第63页 |
| 3.2.3 α-淀粉酶实验 | 第63-64页 |
| 3.2.4 油菜素内酯（BR）敏感性检测 | 第64页 |
| 3.2.5 DNA提取步骤 | 第64-65页 |
| 3.2.6 定位引物的发展 | 第65页 |
| 3.2.7 聚合酶链式反应（PCR反应） | 第65页 |
| 3.2.8 琼脂糖凝胶电泳实验 | 第65页 |
| 3.2.9 DNA产物的纯化 | 第65页 |
| 3.2.10 测序 | 第65页 |
| 3.2.11 SG4功能载体的构建 | 第65-66页 |
| 3.2.12 细胞总RNA提取步骤 | 第66-67页 |
| 3.2.13 cDNA反转录程序 | 第67页 |
| 3.2.14 实时定量基因扩增荧光检测（Q-PCR）程序 | 第67-68页 |
| 3.2.15 感受态细胞制备程序 | 第68-69页 |
| 3.2.16 大肠杆菌的转化 | 第69页 |
| 3.2.17 大肠杆菌（E.coli）质粒DNA的提取 | 第69-70页 |
| 3.2.18 农杆菌的转化 | 第70页 |
| 3.2.19 水稻基因转化程序 | 第70-71页 |
| 3.3 实验结果 | 第71-81页 |
| 3.3.1 突变体sg4的表型描述 | 第71-72页 |
| 3.3.2 SG4的精细定位 | 第72-74页 |
| 3.3.3 候选基因的测序 | 第74-75页 |
| 3.3.4 SG4的互补实验 | 第75-77页 |
| 3.3.5 SG4在水稻不同器官中的表达模式 | 第77页 |
| 3.3.6 BR相关基因在突变体sg4中的表达 | 第77页 |
| 3.3.7 BL对SG4的反馈抑制作用 | 第77-79页 |
| 3.3.8 突变体sg4对BR的敏感性反应 | 第79-81页 |
| 3.4 讨论 | 第81-85页 |
| 3.4.1 sg4是d11的弱等位突变体 | 第81-82页 |
| 3.4.2 SG4在 5'UTR区的突变导致表型变化 | 第82页 |
| 3.4.3 sg4的粒型成因 | 第82-83页 |
| 3.4.4 sg4的育性降低 | 第83-85页 |
| 第四章 结论 | 第85-88页 |
| 4.1 表型相关性与QTL相关性比较 | 第85页 |
| 4.2 qGW12的初定位结果 | 第85页 |
| 4.3 qGW12的精细定位结果 | 第85页 |
| 4.4 突变体sg4的表型分析 | 第85-86页 |
| 4.5 SG4的精细定位、克隆与功能验证 | 第86页 |
| 4.6 SG4的表达模式 | 第86页 |
| 4.7 SG4的表达受BL反馈抑制调控 | 第86页 |
| 4.8 突变体sg4对BL反应具有组织特异性 | 第86-87页 |
| 4.9 突变体sg4的粒长变化的解剖学依据 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-100页 |
| 附录 | 第100-106页 |
| 1 主要试剂及缓冲液的配制 | 第100-102页 |
| 2 培养基的配制 | 第102-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
| 作者简历 | 第107页 |
