| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-23页 |
| 1.1 植物细胞壁的结构与功能 | 第13-14页 |
| 1.1.1 植物细胞壁的结构 | 第14页 |
| 1.1.2 植物细胞壁的功能 | 第14页 |
| 1.2 水稻脆性突变体的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3 水稻细胞壁的研究进展 | 第15-21页 |
| 1.3.1 纤维素合酶亚基 | 第16-20页 |
| 1.3.2 囊泡运输影响细胞壁合成 | 第20页 |
| 1.3.3 其它调控细胞壁合成的基因 | 第20-21页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第二章 突变材料bn1的遗传分析及定位 | 第23-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第23页 |
| 2.1.2 实验中常用的分子生物学试剂和仪器 | 第23页 |
| 2.1.2.1 试验中所涉及的分子生物学试剂 | 第23页 |
| 2.1.2.2 试验中所涉及的分子生物学仪器 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-31页 |
| 2.2.1 化学诱变剂甲基磺酸乙酯（EMS）处理武运粳7号 | 第23-24页 |
| 2.2.2 实验材料的栽培条件 | 第24页 |
| 2.2.3 bn1突变体的遗传分析 | 第24页 |
| 2.2.4 突变体bn1农艺性状的调查 | 第24页 |
| 2.2.5 细胞壁糖的测定 | 第24-25页 |
| 2.1.5.1 纤维素测定 | 第24页 |
| 2.1.5.2 7 种细胞壁单糖的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.6 定位群体 | 第25页 |
| 2.2.7 DNA的提取 | 第25-26页 |
| 2.2.8 通过SSR、Indel标记定位突变基因 | 第26页 |
| 2.2.9 PCR反应体系以及扩增程序 | 第26页 |
| 2.2.10 电泳检测分析 | 第26-27页 |
| 2.2.11 BN1基因的定位 | 第27-28页 |
| 2.2.11.1 BN1基因的初定位 | 第27-28页 |
| 2.2.11.2 BN1的精细定位 | 第28页 |
| 2.2.12 转录组测序 | 第28页 |
| 2.2.13 相关基因表达分析 | 第28-31页 |
| 2.2.13.1 RNA的提取 | 第28-29页 |
| 2.2.13.2 RNA的反转录 | 第29页 |
| 2.2.13.3 RT-PCR | 第29-31页 |
| 第三章 结果与分析 | 第31-45页 |
| 3.1 突变体bn1的表型特征 | 第31-35页 |
| 3.1.1 水稻脆性突变体bn1的来源 | 第31页 |
| 3.1.2 bn1植株矮化 | 第31-32页 |
| 3.1.3 bn1穗部性状的变化 | 第32-33页 |
| 3.1.4 bn1的籽粒变小 | 第33-35页 |
| 3.2 bn1细胞壁组份的改变 | 第35-38页 |
| 3.2.1 bn1茎节的纤维素含量下降 | 第35页 |
| 3.2.2 bn1节间纤维素含量的比较 | 第35-36页 |
| 3.2.3 茎节主要单糖组份的比较 | 第36-37页 |
| 3.2.4 节间主要单糖组份的比较 | 第37-38页 |
| 3.3 BN1基因的遗传分析 | 第38-41页 |
| 3.3.1 bn1的表型受隐性单基因控制 | 第38-39页 |
| 3.3.2 BN1基因的初步定位 | 第39-40页 |
| 3.3.3 BN1基因的精细定位 | 第40-41页 |
| 3.4 相关基因的表达分析 | 第41-45页 |
| 3.4.1 RNA-seq转录组比较 | 第41-42页 |
| 3.4.2 脆性相关基因表达比较 | 第42-43页 |
| 3.4.3 脆性相关基因在茎节中的表达 | 第43-44页 |
| 3.4.4 脆性相关基因在节间中的表达 | 第44-45页 |
| 第四章 结论与讨论 | 第45-47页 |
| 4.1 讨论 | 第45-46页 |
| 4.2 结论 | 第46页 |
| 4.3 展望 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 附录 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 作者简历 | 第55页 |