| 缩略语表 | 第7-12页 |
| 中文摘要 | 第12-15页 |
| 英文摘要 | 第15-18页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 文献回顾 | 第21-34页 |
| 第一部分 创伤性脑损伤的机制 | 第21-26页 |
| 1 创伤性脑损伤基础 | 第21页 |
| 2 氧化应激与线粒体功能异常 | 第21-22页 |
| 3 NMDA受体和TBI | 第22-23页 |
| 4 炎性因子和TBI | 第23页 |
| 5 AMPA受体和TBI | 第23-24页 |
| 6 动物行为学和TBI | 第24-26页 |
| 第二部分 Homer蛋白在神经系统疾病中的作用 | 第26-31页 |
| 1 Homer蛋白家族 | 第26-28页 |
| 2 Homer和应激反应 | 第28页 |
| 3 Homer和神经病理性痛 | 第28-29页 |
| 4 Homer与癫痫 | 第29页 |
| 5 Homer与阿尔兹海默症 | 第29-30页 |
| 6 Homer与药物成瘾性 | 第30页 |
| 7 Homer与精神分裂症 | 第30-31页 |
| 第三部分 质谱在神经系统疾病中的作用 | 第31-34页 |
| 1 质谱的概念 | 第31页 |
| 2 质谱在神经系统疾病中的应用 | 第31-32页 |
| 3 质谱的分析 | 第32-34页 |
| 第一部分 TBI后病理变化及蛋白组学研究 | 第34-55页 |
| 1 材料 | 第34-37页 |
| 1.1 实验动物 | 第34页 |
| 1.2 实验试剂 | 第34-36页 |
| 1.3 实验仪器 | 第36-37页 |
| 1.4 实验试剂 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-44页 |
| 2.1 在体动物TBI模型的建立 | 第37-38页 |
| 2.2 动物行为学检测 | 第38-40页 |
| 2.3 脑水肿程度检测 | 第40页 |
| 2.4 HE染色 | 第40-41页 |
| 2.5 TUNEL染色 | 第41-42页 |
| 2.6 蛋白质谱分析 | 第42-44页 |
| 2.7 统计学分析 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-51页 |
| 3.1 TBI后神经功能评分 | 第44页 |
| 3.2 TBI后动物行为学变化 | 第44-47页 |
| 3.3 TBI脑水肿程度检测 | 第47页 |
| 3.4 小鼠TBI后脑片HE染色结果 | 第47-48页 |
| 3.5 小鼠TBI后对凋亡的影响 | 第48-49页 |
| 3.6 小鼠TBI后蛋白质谱分析 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-55页 |
| 4.1 TBI导致神经损伤 | 第51-52页 |
| 4.2 TBI后引起神经蛋白组变化 | 第52-55页 |
| 第二部分 Homer1a在TBI中的作用及信号通路调节机制 | 第55-93页 |
| 1 材料 | 第55-60页 |
| 1.1 实验动物 | 第55页 |
| 1.2 慢病毒载体 | 第55-56页 |
| 1.3 实验试剂 | 第56-58页 |
| 1.4 实验仪器 | 第58-59页 |
| 1.5 实验试剂 | 第59-60页 |
| 2 方法 | 第60-67页 |
| 2.1 在体动物TBI模型的建立（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.2 小鼠神经功能学评分（NSS评分）（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.3 脑水肿程度检测（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.4 Morris水迷宫测试（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.5 高架十字迷宫（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.6 旷场实验（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.7 蛋白提取（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.8 蛋白定量（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.9 TUNEL染色（与第一部分方法相同） | 第60页 |
| 2.10 总RNA的提取 | 第60-61页 |
| 2.11 cDNA的合成：RNA反转录 | 第61页 |
| 2.12 荧光实时定量检测表达 | 第61-62页 |
| 2.13 Western blot检测 | 第62-64页 |
| 2.14 免疫组织化学 | 第64-65页 |
| 2.15 免疫荧光法 | 第65页 |
| 2.16 皮层内注射慢病毒转染 | 第65-66页 |
| 2.17 Homer1a基因敲除小鼠鉴定 | 第66-67页 |
| 2.18 蛋白质谱分析（与第一部分方法相同） | 第67页 |
| 2.19 统计学分析（与第一部分方法相同） | 第67页 |
| 3 结果 | 第67-88页 |
| 3.1 小鼠TBI后Homer1在脑组织中的蛋白表达水平变化 | 第67-69页 |
| 3.2 Homer1a基因敲除小鼠鉴定 | 第69-71页 |
| 3.3 小鼠皮层内转染 | 第71-72页 |
| 3.4 调节Homer1a表达在动物行为学中的作用 | 第72-75页 |
| 3.5 调节Homer1a表达对神经功能评分的影响 | 第75-76页 |
| 3.6 调节Homer1a在小鼠脑中的表达对脑水肿程度的改变 | 第76-77页 |
| 3.7 质谱分析Homer1a基因敲除后的蛋白组变化 | 第77-83页 |
| 3.8 调节Homer1a表达对相关通路蛋白的影响 | 第83-88页 |
| 4 讨论 | 第88-93页 |
| 小结 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-120页 |
| 个人简历和研究成果 | 第120-122页 |
| 致谢 | 第122页 |
