| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 文献综述 | 第13-26页 |
| 1.1 草胡椒属植物研究概述 | 第13-22页 |
| 1.1.1 草胡椒属植物化学成分研究 | 第13-18页 |
| 1.1.2 草胡椒属植物药理活性研究 | 第18-22页 |
| 1.1.2.1 草胡椒属植物的传统药用 | 第18页 |
| 1.1.2.2 抗菌、抗真菌、抗病毒活性 | 第18-19页 |
| 1.1.2.3 抗寄生虫的活性 | 第19-20页 |
| 1.1.2.4 细胞毒活性 | 第20-21页 |
| 1.1.2.5 抗炎活性 | 第21-22页 |
| 1.1.2.6 其他活性 | 第22页 |
| 1.2 肿瘤与细胞凋亡概述 | 第22-25页 |
| 1.2.1 凋亡与肿瘤 | 第22页 |
| 1.2.2 细胞凋亡 | 第22-23页 |
| 1.2.3 线粒体介导的内源凋亡途径 | 第23页 |
| 1.2.4 死亡受体介导的外源途径 | 第23页 |
| 1.2.5 细胞周期与细胞凋亡 | 第23-24页 |
| 1.2.6 P38MAPK与细胞凋亡 | 第24页 |
| 1.2.7 活性氧与细胞凋亡 | 第24-25页 |
| 1.3 研究意义与内容 | 第25-26页 |
| 2 三种草胡椒属植物提取物对U937细胞增殖的影响 | 第26-33页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第26-28页 |
| 2.2.1 试验细胞 | 第26页 |
| 2.2.2 植物材料 | 第26页 |
| 2.2.3 实验器材 | 第26-27页 |
| 2.2.4 主要试剂 | 第27-28页 |
| 2.2.5 试剂配制 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第28-29页 |
| 2.3.2 植物提取 | 第29页 |
| 2.3.3 MTT比色法检测细胞活力 | 第29页 |
| 2.4 结果与分析 | 第29-31页 |
| 2.4.1 三种植物乙醇提取物对U937细胞增殖的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.2 三种植物各极性部位对U937细胞增殖的影响 | 第30-31页 |
| 2.5 讨论 | 第31-32页 |
| 2.6 小结 | 第32-33页 |
| 3 豆瓣绿提取物对人单核细胞白血病U937细胞凋亡的分子机制 | 第33-49页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 材料与试剂 | 第33-35页 |
| 3.2.1 试验细胞 | 第33页 |
| 3.2.2 实验材料 | 第33页 |
| 3.2.3 实验器材 | 第33页 |
| 3.2.4 主要试剂 | 第33-35页 |
| 3.2.5 试剂配制 | 第35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第35-36页 |
| 3.3.2 MTT比色法检测细胞活力 | 第36页 |
| 3.3.3 细胞凋亡检测 | 第36页 |
| 3.3.4 细胞凋亡形态学观察 | 第36页 |
| 3.3.5 细胞周期分析 | 第36页 |
| 3.3.6 线粒体膜电势检测 | 第36-37页 |
| 3.3.7 活性氧检测 | 第37页 |
| 3.3.8 细胞总蛋白的提取与定量 | 第37页 |
| 3.3.9 Western Blot检测蛋白表达 | 第37-38页 |
| 3.4 结果与分析 | 第38-47页 |
| 3.4.1 豆瓣绿提取物诱导U937细胞凋亡 | 第38-42页 |
| 3.4.2 豆瓣绿提取物引起U937细胞周期阻滞 | 第42-44页 |
| 3.4.3 豆瓣绿乙酸乙酯部位诱导U937细胞凋亡的分子机制 | 第44-47页 |
| 3.5 结论 | 第47-48页 |
| 3.6 小结 | 第48-49页 |
| 4 豆瓣绿乙酸乙酯部位各组分抑制U937细胞增殖的研究 | 第49-56页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 材料与试剂 | 第49页 |
| 4.2.1 试验细胞 | 第49页 |
| 4.2.2 实验材料 | 第49页 |
| 4.2.3 实验器材 | 第49页 |
| 4.2.4 主要试剂 | 第49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-51页 |
| 4.3.1 分离纯化方法 | 第49-50页 |
| 4.3.2 细胞培养 | 第50页 |
| 4.3.3 MTT 比色法检测细胞活力 | 第50-51页 |
| 4.4 结果与分析 | 第51-55页 |
| 4.4.1 豆瓣绿极性萃取部位对U937细胞增殖活性的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.2 豆瓣绿乙酸乙酯部位各组分对U937细胞增殖活性的影响 | 第52-53页 |
| 4.4.3 单体化合物的细胞毒活性筛选 | 第53-55页 |
| 4.5 小结 | 第55-56页 |
| 5 PeperobtusinA诱导U937细胞凋亡的分子机制 | 第56-72页 |
| 5.1 引言 | 第56页 |
| 5.2 材料与试剂 | 第56-57页 |
| 5.2.1 试验细胞 | 第56页 |
| 5.2.2 实验材料 | 第56页 |
| 5.2.3 实验器材 | 第56-57页 |
| 5.2.4 主要试剂 | 第57页 |
| 5.3 实验方法 | 第57-58页 |
| 5.3.1 细胞培养 | 第57页 |
| 5.3.2 MTT 比色法检测细胞活力 | 第57页 |
| 5.3.3 细胞凋亡检测 | 第57页 |
| 5.3.4 细胞周期分析 | 第57页 |
| 5.3.5 线粒体膜电势检测 | 第57页 |
| 5.3.6 活性氧检测 | 第57-58页 |
| 5.3.7 细胞总蛋白的提取与定量 | 第58页 |
| 5.3.8 Western Blot 检测蛋白表达 | 第58页 |
| 5.4 结果与分析 | 第58-71页 |
| 5.4.1 Peperobtusin A 诱导细胞凋亡 | 第58-60页 |
| 5.4.2 Peperobtusin A 引起 U937 细胞周期阻滞 | 第60页 |
| 5.4.3 Peperobtusin A 引起 U937 细胞活性氧升高 | 第60-62页 |
| 5.4.4 Peperobtusin A 引起 U937 细胞线粒体膜电位降低 | 第62-63页 |
| 5.4.5 Peperobtusin A 诱导 U937 细胞凋亡的分子机制 | 第63-71页 |
| 5.5 小结 | 第71-72页 |
| 讨论 | 第72-73页 |
| 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-84页 |
| 附录 A缩略语对照 | 第84-85页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
