| 英文缩略词 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Summary | 第9-12页 |
| 第一部分 引言 | 第12-23页 |
| 第一章 癫痫的定义及临床分类 | 第12页 |
| 第二章 内侧颞叶癫痫的表现、特征及分类 | 第12-13页 |
| 1. 内侧颞叶癫痫的临床及脑电表现 | 第12页 |
| 2. 海马硬化-内侧颞叶癫痫 | 第12-13页 |
| 第三章 海马硬化的病因及病理表现 | 第13-15页 |
| 1. 海马硬化与MTLE的关系 | 第13页 |
| 2. 海马硬化的病理表现 | 第13-15页 |
| 第四章 HS-MTLE的动物模型 | 第15-17页 |
| 1. HS-MTLE动物模型的意义 | 第15页 |
| 2. 海人酸诱导模型 | 第15-17页 |
| 第五章 Notch1信号通路与HS-MTLE | 第17-22页 |
| 1. Notch分子、配体及下游信号通路 | 第17-21页 |
| 2. Notch1在HS-TLE形成过程中可能的作用 | 第21-22页 |
| ·Notch1的细胞功能与HS-MTLE病理变化有相似之处 | 第21页 |
| ·Notch1在损伤后神经再生中发挥作用 | 第21页 |
| ·Notch1通路与神经元兴奋性有关 | 第21页 |
| ·NICD1水平在HS-MTLE病侧海马中上调 | 第21-22页 |
| 第六章 本实验拟解决的问题 | 第22-23页 |
| 第二部分 材料与方法 | 第23-31页 |
| 第一章 实验动物 | 第23页 |
| 1. 饲养方法 | 第23页 |
| 2. 动物伦 | 第23页 |
| 第二章 小鼠慢性期模型建立及海马内电极-加药装置模型的建 | 第23-26页 |
| 1. 主要试剂及仪器 | 第23-25页 |
| 2. 实验方法 | 第25-26页 |
| ·KA诱导HS-MTLE慢性期模型建立 | 第25页 |
| ·慢性期海马内电极-加药装置的模型建 | 第25-26页 |
| ·急性期海马内电极-加药装置的模型建 | 第26页 |
| 第三章 激活或抑制Notch1分子,及录像脑电图监测 | 第26-28页 |
| 1. 主要试剂及仪器 | 第26-27页 |
| 2. 实验方法 | 第27-28页 |
| ·慢性期小鼠操作方法 | 第27-28页 |
| ·急性期小鼠操作方法 | 第28页 |
| 第四章 免疫荧光 | 第28-30页 |
| 1. 实验材料 | 第28页 |
| 2. 主要试剂 | 第28-29页 |
| 3. 实验方法 | 第29-30页 |
| 第五章 统计学方法 | 第30-31页 |
| 第三部分 结果 | 第31-44页 |
| 第一章 慢性期注射试验药物之前的背景EEG | 第31-33页 |
| 第二章 慢性期注射Jagged1后发作时间减少 | 第33-38页 |
| 1. 慢性期小鼠基线期发作时间稳定 | 第33-35页 |
| 2. 慢性期注射Jagged1后发作时间减少 | 第35-38页 |
| 第三章 急性期小鼠注射Jagged1后发作增加 | 第38-43页 |
| 1. 正常小鼠及注射KA后EEG表现 | 第38-41页 |
| 2. 注射Jagged1后发作时间、发作次数较对照组增加 | 第41-42页 |
| 3. 注射DAPT后发作时间、发作次数较对照组减少 | 第42-43页 |
| 第四章 Notch1分子在慢性期小鼠海马DG区表达上调 | 第43-44页 |
| 第四部分 讨论 | 第44-53页 |
| 第一章 急性期及慢性期HS-MTLE模型的EEG表现 | 第44-47页 |
| 1. 与既往文献报道的相似和不同 | 第44页 |
| 2. 与MTLE患者EEG的相似性 | 第44-47页 |
| 第二章 海马内电极-加药模型 | 第47-48页 |
| 第三章 Notch1信号通路的激活和抑制影响癫痫发作 | 第48-50页 |
| 1. Notch1信号通路在急性期模型中发挥促癫痫发生作用 | 第48-49页 |
| 2. Notch1信号通路在慢性期模型中抑制癫痫发作 | 第49-50页 |
| 第四章 Notch1分子在慢性期海马中DG区表达上调 | 第50页 |
| 第五章 经典途径还是非经典途径 | 第50-51页 |
| 第六章 本研究的创新和不足之处 | 第51页 |
| 第七章 近期工作计划 | 第51-53页 |
| 第五部分 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
