目录 | 第1-7页 |
中文摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
前言 | 第11-14页 |
实验材料 | 第14-17页 |
(一)实验仪器及设备 | 第14页 |
(二)实验原料与试剂 | 第14-15页 |
(三)多肽固相合成常用检测方法及溶液配制 | 第15页 |
(四)细胞培养相关试剂 | 第15-17页 |
实验部分 | 第17-56页 |
第一节 P19 丙氨酸扫描序列的合成及活性筛选 | 第19-32页 |
一、 实验方法 | 第19-26页 |
1 P19 丙氨酸修饰序列的合成 | 第19-23页 |
2 P19 丙氨酸修饰序列的抗病毒活性筛选实验方法 | 第23-26页 |
二、 实验结果 | 第26-29页 |
1 P19 修饰多肽合成纯化方法的建立 | 第26-27页 |
2 筛选 P19 丙氨酸扫描修饰多肽对 H1N1 所致的 CPE 的抑制作用 | 第27-28页 |
3 P19-8 剂量依赖性抑制 H1N1 所致 CPE 作用 | 第28-29页 |
4 多肽对 MDCK 细胞增殖的影响 | 第29页 |
三、 讨论 | 第29-32页 |
第二节 P19 序列烷基化修饰 | 第32-36页 |
一、 实验方法 | 第32-33页 |
1 P19 烷基化多肽的合成与纯化 | 第32-33页 |
2 P19 烷基化修饰序列的抗病毒活性筛选实验方法 | 第33页 |
二、 实验结果 | 第33-35页 |
1 P19 烷基化多肽的合成与纯化 | 第33-34页 |
2 烷基化 P19 序列抗流感病毒活性筛选 | 第34-35页 |
三、 讨论 | 第35-36页 |
第三节 P19-8 序列活性提升位点定点修饰实验及 D 构型扫描 | 第36-44页 |
一、 实验方法 | 第36-40页 |
1 P19-8 修饰多肽及 D 构型扫描多肽的合成与纯化 | 第36-38页 |
2 MDCK 细胞、病毒感染和对照药物 | 第38页 |
3 P19-8 修饰多肽抗病毒活性的筛选 | 第38-39页 |
4 抗病毒多肽抑制 H1N1 致细胞病变剂量依赖性实验 | 第39页 |
5 数据处理与分析 | 第39-40页 |
二、 实验结果 | 第40-43页 |
1 P19-8 修饰多肽及 D 构型扫描多肽的合成与纯化 | 第40-41页 |
2 P19-8 修饰多肽抑制 H1N1 致细胞病变病活性的筛选 | 第41-42页 |
3 P19-8-Y 剂量依赖性抑制 H1N1 所致 CPE 作用 | 第42-43页 |
三、 讨论 | 第43-44页 |
第四节 P19-8Y 序列水溶性修饰 | 第44-49页 |
一、 实验方法 | 第44-46页 |
1 P19-8Y 水溶性修饰序列的合成与纯化 | 第44-45页 |
2 MDCK 细胞、病毒感染和对照药物 | 第45页 |
3 溶解性提升多肽抗病毒活性的筛选 | 第45-46页 |
4 修饰后多肽的的细胞毒性检测 | 第46页 |
5 修饰后多肽的剂量依赖性实验 | 第46页 |
6 数据处理与分析 | 第46页 |
二、 实验结果 | 第46-48页 |
1 P19-8Y 水溶性修饰序列的设计与合成 | 第46页 |
2 溶解性提升多肽抗病毒活性的筛选 | 第46-47页 |
3 修饰后多肽对 MDCK 细胞增殖的影响 | 第47-48页 |
三、 讨论 | 第48-49页 |
第五节 P19 修饰多肽体外及鸡胚中抗病毒活性的初步验证 | 第49-56页 |
一、 实验方法 | 第49-52页 |
1 CD 图谱测试及计算机辅助模拟 | 第49页 |
2 病毒及 SPF 鸡胚 | 第49页 |
3 流感病毒血凝滴度测定 | 第49-50页 |
4 抗 IV 多肽对鸡胚内 H1N1 复制的影响 | 第50页 |
5 Western Bolt | 第50-51页 |
6 数据处理与分析 | 第51-52页 |
二、 实验结果 | 第52-55页 |
1 圆二色谱研究分析 P19 系列多肽的二级结构 | 第52页 |
2 多肽二级结构分析 | 第52-53页 |
3 P19-8 鸡胚内抑制 H1N1 活性的验证 | 第53-54页 |
4 P19 活性修饰多肽能抑制流感病毒 M1 蛋白在 MDCK 细胞内的表达 | 第54-55页 |
三、 讨论 | 第55-56页 |
全文总结 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-61页 |
综述 | 第61-67页 |
参考文献 | 第65-67页 |
附图 | 第67-74页 |
个人简历 | 第74-75页 |
致谢 | 第75页 |