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流感病毒血凝素抑制肽结构修饰与活性评价

目录第1-7页
中文摘要第7-9页
Abstract第9-11页
前言第11-14页
实验材料第14-17页
 (一)实验仪器及设备第14页
 (二)实验原料与试剂第14-15页
 (三)多肽固相合成常用检测方法及溶液配制第15页
 (四)细胞培养相关试剂第15-17页
实验部分第17-56页
 第一节 P19 丙氨酸扫描序列的合成及活性筛选第19-32页
  一、 实验方法第19-26页
   1 P19 丙氨酸修饰序列的合成第19-23页
   2 P19 丙氨酸修饰序列的抗病毒活性筛选实验方法第23-26页
  二、 实验结果第26-29页
   1 P19 修饰多肽合成纯化方法的建立第26-27页
   2 筛选 P19 丙氨酸扫描修饰多肽对 H1N1 所致的 CPE 的抑制作用第27-28页
   3 P19-8 剂量依赖性抑制 H1N1 所致 CPE 作用第28-29页
   4 多肽对 MDCK 细胞增殖的影响第29页
  三、 讨论第29-32页
 第二节 P19 序列烷基化修饰第32-36页
  一、 实验方法第32-33页
   1 P19 烷基化多肽的合成与纯化第32-33页
   2 P19 烷基化修饰序列的抗病毒活性筛选实验方法第33页
  二、 实验结果第33-35页
   1 P19 烷基化多肽的合成与纯化第33-34页
   2 烷基化 P19 序列抗流感病毒活性筛选第34-35页
  三、 讨论第35-36页
 第三节 P19-8 序列活性提升位点定点修饰实验及 D 构型扫描第36-44页
  一、 实验方法第36-40页
   1 P19-8 修饰多肽及 D 构型扫描多肽的合成与纯化第36-38页
   2 MDCK 细胞、病毒感染和对照药物第38页
   3 P19-8 修饰多肽抗病毒活性的筛选第38-39页
   4 抗病毒多肽抑制 H1N1 致细胞病变剂量依赖性实验第39页
   5 数据处理与分析第39-40页
  二、 实验结果第40-43页
   1 P19-8 修饰多肽及 D 构型扫描多肽的合成与纯化第40-41页
   2 P19-8 修饰多肽抑制 H1N1 致细胞病变病活性的筛选第41-42页
   3 P19-8-Y 剂量依赖性抑制 H1N1 所致 CPE 作用第42-43页
  三、 讨论第43-44页
 第四节 P19-8Y 序列水溶性修饰第44-49页
  一、 实验方法第44-46页
   1 P19-8Y 水溶性修饰序列的合成与纯化第44-45页
   2 MDCK 细胞、病毒感染和对照药物第45页
   3 溶解性提升多肽抗病毒活性的筛选第45-46页
   4 修饰后多肽的的细胞毒性检测第46页
   5 修饰后多肽的剂量依赖性实验第46页
   6 数据处理与分析第46页
  二、 实验结果第46-48页
   1 P19-8Y 水溶性修饰序列的设计与合成第46页
   2 溶解性提升多肽抗病毒活性的筛选第46-47页
   3 修饰后多肽对 MDCK 细胞增殖的影响第47-48页
  三、 讨论第48-49页
 第五节 P19 修饰多肽体外及鸡胚中抗病毒活性的初步验证第49-56页
  一、 实验方法第49-52页
   1 CD 图谱测试及计算机辅助模拟第49页
   2 病毒及 SPF 鸡胚第49页
   3 流感病毒血凝滴度测定第49-50页
   4 抗 IV 多肽对鸡胚内 H1N1 复制的影响第50页
   5 Western Bolt第50-51页
   6 数据处理与分析第51-52页
  二、 实验结果第52-55页
   1 圆二色谱研究分析 P19 系列多肽的二级结构第52页
   2 多肽二级结构分析第52-53页
   3 P19-8 鸡胚内抑制 H1N1 活性的验证第53-54页
   4 P19 活性修饰多肽能抑制流感病毒 M1 蛋白在 MDCK 细胞内的表达第54-55页
  三、 讨论第55-56页
全文总结第56-58页
参考文献第58-61页
综述第61-67页
 参考文献第65-67页
附图第67-74页
个人简历第74-75页
致谢第75页

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