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拟南芥干旱诱导型启动子的克隆及功能分析

中文摘要第1-6页
Abstract第6-12页
第一章 文献综述第12-38页
 1 旱灾对农业的影响第12-13页
 2 高等植物启动子的研究进展第13-36页
   ·高等植物启动子的基本结构及功能第13-16页
   ·植物启动子的类型第16-33页
   ·植物启动子的主要研究方法第33-36页
 3 本研究的目的和意义第36-38页
第二章 拟南芥干旱诱导型启动子 Atmyb35 的克隆及序列分析第38-48页
 1 材料第38-40页
   ·植物材料第38页
   ·菌株第38页
   ·试剂第38-39页
   ·仪器设备第39页
   ·培养基和溶液配制第39-40页
 2 方法第40-44页
   ·获得目的启动子序列第40页
   ·设计引物第40页
   ·CTAB 法提取少量拟南芥基因组 DNA第40-41页
   ·通过 PCR 反应获得目的启动子第41页
   ·PCR 反应产物回收第41-42页
   ·大肠杆菌 (E. coli ) DH5α热击感受态细胞的制备第42页
   ·PCR 回收产物与 T 载体连接第42-43页
   ·连接产物热激转化第43页
   ·重组质粒提取与酶切鉴定第43-44页
   ·测序结果分析第44页
 3 结果与分析第44-47页
   ·启动子 Atmyb35 的获得第44-46页
   ·启动子 Atmyb35 序列分析第46-47页
 4 结论与讨论第47-48页
第三章 植物表达载体的构建及农杆菌的转化第48-53页
 1 材料第48页
 2 方法第48-50页
   ·构建植物真核表达载体第48-49页
   ·制备农杆菌热激感受态细胞及转化第49-50页
   ·鉴定农杆菌转化子第50页
 3 结果与分析第50-51页
   ·pCAMBIA1301- Atmyb35 植物表达载体构建第50-51页
 4 结论与讨论第51-53页
第四章 GUS 报告基因瞬时表达分析第53-57页
 1 材料第53-54页
   ·主要试剂和植物材料第53页
   ·实验设备第53页
   ·主要溶液的配制第53-54页
 2 方法第54-55页
   ·农杆菌介导侵染烟草第54页
   ·GUS 组织化学染色分析第54-55页
 3 结果与分析第55-56页
   ·感染时间对瞬时表达的影响第55页
   ·组织化学染色条件的优化第55-56页
   ·GUS 组织化学染色结果分析第56页
 4 结论与讨论第56-57页
第五章 通过渐变缺失分析启动子核心序列第57-64页
 1 材料第57-58页
   ·植物材料第57页
   ·菌株与质粒第57页
   ·主要设备第57页
   ·主要试剂第57-58页
 2 方法第58-61页
   ·启动子缺失片段的克隆及表达载体的构建第58-59页
   ·GUS 荧光定量分析第59-61页
 3 结果与分析第61-62页
   ·启动子 Atmyb35 缺失片段的克隆及表达载体的构建第61-62页
   ·荧光定量分析第62页
 4 结论与讨论第62-64页
第六章 烟草遗传转化及转基因植株的检测第64-69页
 1 材料第64-65页
   ·植物材料第64页
   ·主要试剂第64页
   ·菌株与质粒第64页
   ·主要仪器第64页
   ·主要溶液的配制第64-65页
 2 方法第65-66页
   ·农杆菌大规模培养第65页
   ·制备受体烟草叶盘第65页
   ·农杆菌介导的遗传转化和烟草的组织再生及鉴定第65-66页
 3 结果与分析第66-68页
   ·转基因烟草的培养第66-67页
   ·转基因烟草 PCR 验证第67-68页
 4 结论与讨论第68-69页
结论第69-71页
参考文献第71-81页
作者简介第81-82页
致谢第82页

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