摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-15页 |
第一章 综述 | 第15-27页 |
·引言 | 第15页 |
·胚胎神经发育 | 第15-17页 |
·周期性核运动 | 第17-21页 |
·INM的发现 | 第17-18页 |
·INM现象 | 第18-19页 |
·INM分子机制 | 第19-20页 |
·周期性核运动的作用 | 第20页 |
·INM与细胞周期的关系 | 第20-21页 |
·胚胎海马发育 | 第21-23页 |
·海马神经细胞的起源 | 第21-22页 |
·海马组织分层和功能 | 第22-23页 |
·神经发育毒 | 第23-25页 |
·胚胎暴露的影响 | 第23-24页 |
·新生期暴露的影响 | 第24-25页 |
·研究背景与意义 | 第25-26页 |
·课题设计与创新点 | 第26-27页 |
第二章 CPF暴露对胚胎神经前体细胞周期性核运动的即时作用 | 第27-43页 |
前言 | 第27-28页 |
·实验材料 | 第28-30页 |
·试剂及药品 | 第28页 |
·溶液配制 | 第28-30页 |
·主要仪器设备 | 第30页 |
·实验方法 | 第30-35页 |
·实验动物 | 第30页 |
·动物饲养 | 第30-31页 |
·定时胚胎制备 | 第31页 |
·分组和CPF处理 | 第31页 |
·Brdu标记 | 第31-32页 |
·胚胎采集与固定 | 第32页 |
·石蜡包埋与切片 | 第32-33页 |
·脑室定位 | 第33页 |
·免疫组化染色 | 第33-34页 |
·周期性核运动的测量 | 第34-35页 |
·统计学分析 | 第35页 |
·实验结果 | 第35-40页 |
·毒死蜱对神经前体细胞核运动的影响(Brdu标记1小时) | 第35-36页 |
·毒死蜱对神经前体细胞核运动的影响(Brdu标记3小时) | 第36-38页 |
·毒死蜱对神经前体细胞核运动的影响(Brdu标记6小时) | 第38-40页 |
·讨论 | 第40-43页 |
第三章 CPF暴露对胚胎神经前体细胞周期性核运动的滞后作用 | 第43-55页 |
前言 | 第43页 |
·实验材料 | 第43-44页 |
·试剂及药品 | 第43页 |
·溶液配制 | 第43-44页 |
·主要仪器设备 | 第44页 |
·实验方法 | 第44-46页 |
·实验动物 | 第44页 |
·动物饲养 | 第44页 |
·定时胚胎制备 | 第44页 |
·分组和CPF处理 | 第44页 |
·Brdu标记 | 第44-45页 |
·胚胎采集与固定 | 第45页 |
·石蜡包埋与切片 | 第45页 |
·脑室定位 | 第45页 |
·胚胎脑切片INM免疫组化染色 | 第45页 |
·周期性核运动的测量 | 第45-46页 |
·统计学分析 | 第46页 |
·实验结果 | 第46-52页 |
·毒死蜱对神经前体细胞核运动的影响(Brdu标记1小时) | 第46-47页 |
·毒死蜱对神经前体细胞核运动的影响(Brdu标记3小时) | 第47-48页 |
·毒死蜱对神经前体细胞核运动的影响(Brdu标记6小时) | 第48-50页 |
·毒死蜱对神经前体细胞核运动的影响(Brdu标记9小时) | 第50-52页 |
·讨论 | 第52-55页 |
第四章 CPF暴露对胚胎E16海马脑区细胞的影响 | 第55-65页 |
前言 | 第55页 |
·实验材料 | 第55-57页 |
·试剂及药品 | 第55-56页 |
·溶液配制 | 第56页 |
·主要仪器设备 | 第56-57页 |
·实验方法 | 第57-59页 |
·实验动物 | 第57页 |
·动物饲养 | 第57页 |
·定时胚胎制备 | 第57页 |
·分组和CPF处理 | 第57页 |
·胚胎采集和固定 | 第57-58页 |
·E16胚胎石蜡切片步骤 | 第58页 |
·脑室定位 | 第58-59页 |
·形态学定位分析 | 第59页 |
·统计学处理 | 第59页 |
·实验结果 | 第59-63页 |
·对海马CA1区细胞数量影响 | 第60-61页 |
·对海马CA3区细胞数量影响 | 第61-62页 |
·对海马DG区细胞数量影响 | 第62-63页 |
·讨论 | 第63-65页 |
第五章 实验总结与展望 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-75页 |
致谢 | 第75-77页 |
在读期间发表的学术论文 | 第77页 |