摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-11页 |
1 前言 | 第11-29页 |
·植物细胞程序化死亡 | 第11-15页 |
·植物细胞程序化死亡的概念和分类 | 第11-12页 |
·发育型细胞程序化死亡 | 第12页 |
·植物过敏性细胞死亡和假病斑突变体 | 第12-14页 |
·植物细胞衰亡 | 第14-15页 |
·植物光周期开花调节机制 | 第15-21页 |
·光周期开花 | 第15-16页 |
·植物光周期开花调节分子机制 | 第16-21页 |
·泛素化蛋白降解在植物抗病与开花调节中的作用 | 第21-23页 |
·泛素蛋白降解系统 | 第21-22页 |
·泛素蛋白降解与植物病原菌防御反应 | 第22-23页 |
·小GTPase蛋白在植物生长发育和防御反应中的作用 | 第23-27页 |
·小GTPase蛋白的作用与分类 | 第23-24页 |
·植物小GTPase蛋白的功能 | 第24-27页 |
·水稻SPL11介导的植物细胞程序化死亡,防御反应和开花调节机制研究进展 | 第27-28页 |
·本研究的目的和意义 | 第28-29页 |
2 材料与方法 | 第29-32页 |
·植物材料和种植方法 | 第29页 |
·开花时间和农艺性状测定 | 第29页 |
·水稻白叶枯菌接种 | 第29页 |
·载体构建 | 第29-30页 |
·酵母双杂 | 第30页 |
·GST-Pull down鉴定 | 第30页 |
·BiFC和荧光显微镜操作分析 | 第30页 |
·RNA分离与基因表达分析 | 第30-31页 |
·序列编辑,比对与系统进化分析 | 第31-32页 |
3 结果与分析 | 第32-46页 |
·Spin6基因的识别 | 第32页 |
·Spin6编码一个Rho型GTPase型激活蛋白 | 第32-34页 |
·植物Rho GAPs蛋白的系统进化分析 | 第34-36页 |
·SPIN6蛋白定位于整个水稻原生体细胞 | 第36页 |
·SPIN6与SPL11离体(in-vitro)与原位(in-vivo)互作鉴定 | 第36-37页 |
·Spin6转基因植株的表型分析 | 第37-41页 |
·Spin6 RNAi导致植物细胞死亡的形成 | 第37-38页 |
·Spin6 RNAi植株加强了对水稻白叶枯菌的抗性 | 第38-39页 |
·Spin6 RNAi植株在短日照和长日照条件下均表现为晚花 | 第39-40页 |
·Spin6 RNAi植株表现出了矮化,短穗和低结实率的株型特征 | 第40-41页 |
·Spin6 RNAi植株分子信号调节途径机制分析 | 第41-46页 |
·SPin6基因沉默后下调SPL11转录表达水平 | 第41-42页 |
·Spin6 RNAi转基因植株下调了水稻光周期开花调节中Hd1介导的信号途径 | 第42-43页 |
·Spin6 RNAi植株中SPL11和SPIN1光周期节律转录表达型的分析 | 第43-44页 |
·Spin6 RNAi植株中光周期开花调节相关基因光周期节律表达型分析 | 第44-46页 |
4 讨论 | 第46-50页 |
·SPIN6是一个水稻细胞程序化死亡的负调节因子 | 第46页 |
·SPIN6是一个水稻光周期开花的正调节因子 | 第46-47页 |
·SPIN6负调节水稻对白叶枯菌的抗性 | 第47页 |
·SPIN6/SPL11/SPIN1复合体介导水稻细胞程序化死亡,防御反应和开花调节工作机制假设模型 | 第47-50页 |
5 小结 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-67页 |
附录 | 第67-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
作者简介 | 第69-70页 |