| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-15页 |
| 英文缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一章 金属蛋白酶（MMPs）在恶性肿瘤显像中的应用 | 第16-28页 |
| ·前言 | 第16-17页 |
| ·MMPs 和 TIMPs 介绍 | 第17-18页 |
| ·癌症中的 MMPs | 第18页 |
| ·MT1-MMP | 第18-20页 |
| ·体内显像基质金属蛋白酶表达的方法 | 第20-26页 |
| ·光学显像 | 第20-22页 |
| ·PET 和 SPECT 显像 | 第22-25页 |
| ·MRI 对比剂 | 第25-26页 |
| ·显像 MMPs 活动的应用 | 第26-27页 |
| ·小结 | 第27-28页 |
| 第二章 噬菌体随机十二肽库筛选 MT1-MMP 亲和肽 | 第28-46页 |
| ·引言 | 第28-30页 |
| ·实验材料与方法 | 第30-33页 |
| ·实验材料 | 第30页 |
| ·实验仪器 | 第30-31页 |
| ·实验试剂 | 第31-33页 |
| ·实验方法 | 第33-38页 |
| ·肽的固相合成（手工） | 第33-34页 |
| ·铺板 ER2738 细胞的制备 | 第34页 |
| ·噬菌体滴度测定 | 第34-35页 |
| ·MT1-MMP 催化域蛋白表面特异序列肽为靶点筛选亲和肽 | 第35-36页 |
| ·测序噬菌体单链 DNA 的提取 | 第36-37页 |
| ·ELISA 法检测四轮筛选后获得的重组噬菌体克隆与MT1-MMP 特异性小肽的结合活性 | 第37-38页 |
| ·ELISA 法测定筛选的噬菌体肽与 MT1-MMP 特异小肽之间的 Kd 值 | 第38页 |
| ·实验结果 | 第38-43页 |
| ·MT1-MMP 亲和肽的合成 | 第38-39页 |
| ·肽库的亲和筛选 | 第39-41页 |
| ·筛选的亲和小肽的氨基酸序列分析 | 第41页 |
| ·筛选的噬菌体肽和 MT1-MMP 特异序列肽之间解离常数Kd 值的测定 | 第41-43页 |
| ·讨论 | 第43-46页 |
| 第三章 候选小肽与 MT1-MMP 蛋白相互作用研究 | 第46-58页 |
| ·引言 | 第46-48页 |
| ·表面等离子体共振仪结构组成及原理 | 第46-48页 |
| ·实验设计 | 第48-49页 |
| ·实验部分 | 第49-50页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第49页 |
| ·实验方法 | 第49-50页 |
| ·实验结果 | 第50-54页 |
| ·MT1-MMP 催化域蛋白的偶联 | 第50-51页 |
| ·结合分析 | 第51-52页 |
| ·动力学分析 | 第52-54页 |
| ·讨论 | 第54-58页 |
| 第四章 多肽荧光标记及 Cy5.5-AF7p 在荷瘤鼠中的光学显像研究 | 第58-64页 |
| ·前言 | 第58页 |
| ·材料与方法 | 第58-60页 |
| ·实验材料 | 第58页 |
| ·实验仪器 | 第58-59页 |
| ·实验方法 | 第59-60页 |
| ·结果 | 第60-62页 |
| ·多肽荧光标记 | 第60页 |
| ·光学成像方法研究 Cy5.5-AF7P 在体内的 MT1-MMP 靶向性 | 第60-61页 |
| ·光学成像方法研究 Cy5.5-AF7P 在体内的生物学分布 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| 第五章 多肽核素标记及 ~(99m)Tc-HYNIC-AF7P 在荷瘤鼠中的 SPECT显像研究 | 第64-76页 |
| ·前言 | 第64页 |
| ·~(99m)Tc-HYNIC-AF7P(tricine)(TPPTS)的制备及质控 | 第64-69页 |
| ·实验材料 | 第64-66页 |
| ·实验方法 | 第66-67页 |
| ·结果 | 第67-68页 |
| ·讨论 | 第68-69页 |
| ·~(99m)Tc-HYNIC-AF7P 在乳腺癌裸鼠中的显像研究 | 第69-73页 |
| ·实验材料 | 第70-71页 |
| ·实验方法 | 第71页 |
| ·实验结果 | 第71-73页 |
| ·讨论 | 第73-76页 |
| 第六章 结论 | 第76-90页 |
| 作者简介 | 第90-92页 |
| 攻读博士期间发表的论文 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
