摘要 | 第1-3页 |
Summary | 第3-6页 |
第一章 文献综述 | 第6-18页 |
1. 植物自交不亲和 | 第6-7页 |
·自交不亲和的概念 | 第6页 |
·自交不亲和的类型 | 第6-7页 |
2. 自交不亲和的分子机理 | 第7-11页 |
·决定自交不亲和性的基因 | 第7页 |
·孢子体自交不亲和机理 | 第7-9页 |
·配子体自交不亲和机理 | 第9-11页 |
·茄科、蔷薇科植物自交不亲和机理 | 第9-10页 |
·罂粟科自交不亲和机理 | 第10页 |
·禾本科植物自交不亲和机理 | 第10-11页 |
·克服自交不亲和性的研究 | 第11页 |
3. 分子标记技术及其在油菜育种中的应用 | 第11-18页 |
·用于作物育种研究的分子标记 | 第11-13页 |
·RFLP 标记 | 第12页 |
·RAPD 标记 | 第12页 |
·AFLP 标记 | 第12-13页 |
·SSR 标记 | 第13页 |
·分子标记技术在油菜育种中的应用 | 第13-16页 |
·油菜遗传图谱研究 | 第13-14页 |
·油菜亲缘关系研究 | 第14页 |
·油菜遗传多样性研究 | 第14-15页 |
·分子标记辅助选择 | 第15-16页 |
·SSR 标记在油菜育种中的开发与应用 | 第16-17页 |
·分子标记在植物自交不亲和基因中的利用 | 第17-18页 |
第二章 研究目的与意义 | 第18-21页 |
一 研究意义 | 第18-20页 |
二 研究目的和内容 | 第20-21页 |
1. 研究目的 | 第20页 |
2. 研究内容 | 第20-21页 |
·芸芥自交亲和基因的分子标记 | 第20页 |
·SSR 引物在不同属作物中的共用性分析 | 第20-21页 |
第三章 芸芥自交亲和基因的SSR 标记 | 第21-35页 |
一 试验设计 | 第21-25页 |
1. 植物材料 | 第21-22页 |
·实验材料及基础群体构建 | 第21页 |
·取样 | 第21页 |
·自交亲和基因池和自交不亲和基因池的构建 | 第21-22页 |
·引物筛选 | 第22页 |
·连锁性分析 | 第22页 |
2. 实验方法 | 第22-24页 |
·基因组DNA 的提取、纯化及浓度检测 | 第22-23页 |
·提取方法 | 第22页 |
·DNA 纯度及浓度测定 | 第22-23页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第22-23页 |
·紫外吸收法测定 | 第23页 |
·SSR 反应 | 第23-24页 |
·SSR 标记的引物设计 | 第23页 |
·PCR 反应 | 第23-24页 |
3. 试验技术路线 | 第24-25页 |
二 结果与分析 | 第25-33页 |
1. F_2群体的自交亲和性遗传分析 | 第25页 |
2. 亲和基因的SSR 标记 | 第25-33页 |
·芸芥基因组DNA 的提取 | 第25页 |
·SSR 反应体系优化 | 第25-29页 |
·DNA 模板对稳定性影响 | 第26页 |
·10×PCR buffer (主要含Mg~(2+))量对SSR 扩增的影响 | 第26-27页 |
·Taq 聚合酶浓度对稳定性的影响 | 第27-28页 |
·dNTPs 浓度对稳定性影响 | 第28页 |
·引物量对稳定性影响 | 第28-29页 |
·SSR 条件优化的结果 | 第29页 |
·SSR 标记分析 | 第29-33页 |
·引物的筛选 | 第29-30页 |
·SSR 引物在两池间的扩增 | 第30-31页 |
·SSR 引物在BC_1F_1、F_2中的扩增 | 第31-33页 |
三 结论与讨论 | 第33-35页 |
1.PCR 反应体系各组分的影响 | 第33页 |
2. 自交亲和性的遗传方式 | 第33页 |
3. BC_1F_1、F_2 群体及其应用价值 | 第33-34页 |
4. 工作展望 | 第34-35页 |
第四章 SSR 标记在芸芥与白菜型油菜中的共用性分析 | 第35-40页 |
一 植物材料与试验方法 | 第35-36页 |
1. 植物材料 | 第35页 |
2. 试验方法 | 第35-36页 |
二 结果与分析 | 第36-39页 |
1. 植物材料DNA 浓度质量的检测 | 第36页 |
2.SSR-PCR 扩增检测 | 第36-39页 |
·SSR 标记在芸芥与白菜型油菜中的特异性比较 | 第36-37页 |
·SSR 引物在芸芥与白菜型油菜间的共用性分析 | 第37-39页 |
三 结论与讨论 | 第39-40页 |
小结 | 第40-42页 |
参考文献 | 第42-48页 |
主要试剂及溶液(缓冲液)配制 | 第48-50页 |
作者简历 | 第50-51页 |
导师简介 | 第51-52页 |